Анализ структурной организации кальмодулинактивируемой Ca2+, Mg3+ - АТФазы эритроцитов человека с помощью моноклональных антител тема автореферата и диссертации по химии, 02.00.10 ВАК РФ

Фещенко, Марина Станиславовна АВТОР
кандидата химических наук УЧЕНАЯ СТЕПЕНЬ
Москва МЕСТО ЗАЩИТЫ
1991 ГОД ЗАЩИТЫ
   
02.00.10 КОД ВАК РФ
Автореферат по химии на тему «Анализ структурной организации кальмодулинактивируемой Ca2+, Mg3+ - АТФазы эритроцитов человека с помощью моноклональных антител»
 
Автореферат диссертации на тему "Анализ структурной организации кальмодулинактивируемой Ca2+, Mg3+ - АТФазы эритроцитов человека с помощью моноклональных антител"

АКАДЕМИЯ НАУК СССР ИНСТИТУТ БИООРГАНИЧЕСКОИ МИ 1Ш.М.М. ШИШКИНА

на правах рукописи

ФЕЩЕНКО Марина Станиславовна

АНАЛИЗ СТРУКТУРНОЙ ОРГАНИЗАЦИИ 1СДЛЫгЮДУЛ1Я1ЛЗГ11Б:ЕРУЕ?.Ю11 Сз^.Мс^-АТФазы ЭРИТРОЦИТОВ ЧЕЛОВЕКА С ПОМОЩЬЮ НОНОКЛОНАЛЫШ АНТИТЕЛ •

специальность 02,00.10 - Биоорганическая екня, химия природных соединений ц физиологически актантах Ееществ

АВТОРЕФЕРАТ диссертации на соискание ученой степени кандидата нплгсеских наук

Москва, 1991

Работа выполнена в Ордена Трудового Красного Знамени Институте биооргаиической химии им- М. М. Шемякина АН СССР

.Научный руководитель - доктор химических наук Н.Н.Модянов Официальные оппоненты: доктор химических наук Н.Г.Абдулзев;

Ведущая организация: Всесоюзный кардиологический научный центр

на заседании Специализированного совета Д 002.35.01 при Институте биоорганической химии им. М. М. Шемякина АН СССР по адресу: 117871, ГСП-7, Москва, В-437, ул. Миклухо-Маклая 16/10.

С диссертацией можно ознакомиться в библиотеке Института биоорганической химии им. М. М. Шемякина АН СССР

кандидат химических наук Г.А,Габибов.

АШ СССР

Защита состоится " " 1991 г. в часов

автореферат разослан ¿¿с?с ¿Жл 1991 г.

Ученый секретарь специализированного Совета, кандидат химических наук

В.А.Несмеянов

ХАРАКТЕРИСТИКА РАБОТЫ

Актуальность проблемы. Исследование транспортах систем, с помощью которых потенциалобразукцке ионы преодолевает нембранние барьеры клетки, обеспечивая ее ионный гсиеостаз. является актуальной проблемой совреиежой физико-химической биологии. С точки зрения жизнеобеспечения клетки важное значение ткет транспорт конов универсальны* регуляторов внутрнклстз^гпсс процессов. 3 основе регуяяторкого действия леяит сбалансированное изменение концентрации катиона в клетке, .являющееся результатом фушсциони-рованкя слокной сети кекбрэштх Са ' -транспортнрувзщх систем. Одна из таких систем - Са^+-АТФаза плазматических иекбран, найдена практически во всех клетка; зукаркот. Используя энергии гидролиза АТФ," этот фермент осуществляет транскеыбранны» перенос иоков Са2+ иротав более чек тысячекратного, градиента их концентрации. Работа

о

Са -насоса находится под контролем болывго числа природных регуляторов: кальиодулина, !скслых фосфолигадев, цАМФ-зашюиыой протеинкиназц, протеинкиназн с, калытаина и других.

К настоящему времени накоплена значительная информация о строении к функции Са^+-АТФазы плазматических мембран: определена полная аминокислотная последовательность белковой цепи, локализованы основные функциональные к рагуляторные области фериента. Дальнейшее развитие предстаагапгй о принципах функционирования и регуляции Са^+-насоса на юлекулярном уровне не возможно без детального анализа пространственной организации фермента. Однако трудности технического характера в настоящее гремя не позволяют- исследоьать трехмернур структуру молекулы АТФази путей рэнтгекоструктурного анализа. Применение таких

традиционных методов как гидрофобное мечение и ограниченный протеолиз в составе нативного липопротеинового комплекса затруднено из-за незначительного содержания белка в мембране. В связи с этим представляется перспективным иммунохимический подход к изучение топографии Са^+~АТФазы в мембране, в частности, использование метоклональных антител, являюцихся селективным»: .зондами на конкретные участки фермента. С помощью моноклональных антител - также каазт быть получена информация о локализации функциональных доменов белка и его полиморфизма.

Цель ргбога, Настоящая работа является частая проводимых в

Институте биоорганической зишни струэтурно-функцкональкьк

исследований Са -АТФаза эритроцитов человека. Цель работа

заключалась в создании представительной коллеюцш моноклональных р. ■

антител к Са -АТФазе и исследовании с юс поиощьв структурно-функцконалк-шк свойств фермента, в первуп очередь его пространственной организации в плазматической неибране.

Научная новизна и практическая ценность работа, Получена коллекция гибридом, продуцирующих моноклоналыше антитела к Са^-АТФазз эритроцитов человека. Проведена ■ характеристика этих антител: определены константы аффинности, класс и подкласс полученных антител. Определена ориентация эпитопов - мииеней антител, относительно плаз1атической мембраны.

Разработан подход к локализации антигенных детерминант белка, стимулировавших образование моноклональных антител. С помощьв этого подхода впервые идентифицирован экстрацеллвлярный фрагмент 130-142 полипептидной цепи, что позволило предлоапъ

экспериментально обоснованнуг модель трансмембранной организации н-концевой области молекулы созданной коллекции

выявлены коноклональные антитела к. по-крайней мере, двум различным изофоршм Са^+-АТФазы. Это могет стать основой метода разделения изотерм фермента с целью изучения их функциональных особенностей, а такте распределения изоформ в различных органах и тканях илекопитавцих.

Объем работа.. Диссертация содеркгг страниц мгшнописного

текста и состоит из введения, обзора литературы, обсуждения результатов, экспериментальной части, вызодов и списка цитируемой литературы С ссылок).

СОДЕРЖАНИЕ РАБОТЫ

I. Получение донокдожишьа; атхипел к Со?+-££Фазе зращюцшоб человека и их яаратерислпша.

Выделение фермента проводили в две стадии: получение фракции плазматических мембран эритроцитов С теней) и очистка Са2+-АТФазы с помощь» аффинной хроматографии. На первой стадии выход мембранных белков из одного литра зритроцитарной кассы составлял обычно 3-4 г. На стадии аффинной хроматографии получали 0,5-0,7 кг Са<2+-АТФазы т I г мембранных белков. Освоение и оптимизация процесса. выделения фермента явилось отправной точкой структурно-функциональных исследований Са2+-АТФази.

С целыз создания наиболее представительной коллекции

ыоноклональных антител СмкАТ) к Са^+-АТФазе эритроцитов человека при иммунизации копользовали четыре различных препарата антигена: С а) - нитроцеллюлозные реплики белковой полосы 138 кДа, полученные путем электропереноса кз полиакриламидного геля; (в) - нативный солюбилизированжй фермент; С с) - денатурированную Са^+-АТФазу в растворе; (о) - кальмодулин-связываюший фрагмент 53 кДа, полученный путей ограниченного гидролиза ке;.сбрано-сзязанной Са2+ -АТФазы трипсином с последующей хроматографией на кальнодулин-сефарсзе. Для препаратов А и в использовали 36-дневную схему иммунизации. В случае нативного фермента в к денатурированной Са^+-АТФазы в растворе с наиболее эффективной оказалась двухнедельная схеаа иммунизации.

Гибридизацию спленоцитов иммунных мышей с миеломной линией Хб3-Ад8.б53. проводили по методу Келера и. Цильштейна в модификации Фазекаса.

Для обнаружения положительных клонов, тс есть синтезирующих антитела к Са~+-АТФазе, использовали иммуноферментный анализ (ИФА). В результате было отобрано 16 устойчивых гибридных ¡слонов. Они были дважды клонированы методом лимитирующих разведений и от каждого первичного клона в конечном итоге было взято в дальнейшую работу по одному наиболее активному (табл.1). Класс я подкласс моноклональных шггител определяли итгуно^ерментньаг методом, используя коммерческие моноспеци^ические антисыворотки (табл.I).. Гибридизация а, проведенная после иммунизации животного антигеном, иммобилизованным на нитроцеллюлозе, дала антитела только класса 1дм. Все антитела, полученные после гибридизаций в, с и X), принадлежат к иммуноглобулинам класса с.

Степень сродства ыкАТ к нативной и денатурированной Са -

АТФазе определяли методом ИФА. Антитела, отобранные в результате гибридизаций А и. с, обнаруживали более высокое сродство к денатурированной Лорке фермента. Антитела, получению после гибридизации з, одинаково связывались с нативной и денатурированной АТФазой. Антитела к фрагменту 53 кДа (гибридизация с) взаимодействовали только с иативным ферментом. Аффинность мококлональншс антител определяли по методу Бзати. Расчктанные Каф приведены в табл. I. Наиболее высокоаффишше аниггела были получены в случае тшункзацш; антигеном, ншлобг-тизоваиньи: на китроцеллклсзе, что. вероятно, объясняется ад'ьпвантквкиьш свойствами носителя.

Для доказательства специфичности мокожональнкх антител изучали их взаимодействие с суммарной фракцией белков зритроци-тарной мембраны. На рис. I представлены результаты ккмуноблоттинга препаратов •«енбрашшх белков зртггроцитов человека и очищенной Са~+-АТФазы с использованием антитела 208. В обоих препаратах антитело 2В8 выявляет осковнуп белковуи полосу около 140 кДа, что соответствует молекулярной массе фермента. Аналогичная картина была получена и при ккмунодетекции фермента с помошьв других антител из нашей коллекции, игаагочая антитела к фрагменту 53 кДя.

Последние, как отмечалось р.ше, не взаимодействовали с р.

денатурированной Са -АТФазой. Высокая специфичность консгло-нальнык антител была подтверждена также в ходе экспериментов по выявлении перекрестного взаимодействия антител с Нг+,к+-АТФазой почек свиньи и н+-АТФазой митохондрий сердца быка в кнмуно-ферментном анализе. Лиеь одно антитело С 2п10) взаимодействовало с

На+,к+-АТФазой, но с более низким сродством, чем с Сас,+-насосок

7 7 -Т

С!'аф = 1.25*10 н 8,10*10 , И . соответственно ). С протонной

АТФазой антитела не связывались. Полученные данные свидетельствует

Таблица I. Характеристика моноклональных антител.

СП

ПРОТОКОЛ ИММУНИЗАЦИИ мнАТ Класс и подкласс АТ Каф, М"1 Взз1М0действие Сохранение эпитопов после исчерпывающего гидролиза Картирсеа-ние эпито -пов мнАТна

с цитатными эритроцитами с инвертированными везикулгми

тригю+юм химо-трипсином триттмес-ких фраг-ментах.нДа

А. Фермент иммобилизованный на нитроцеллюлозе (36 дней) 1Е4 608 102 ЗС6 1дМ 1оМ 1дМ 2.60-Ю9 1,31 • 109 3,1 -ю9 8,33-10° <• • ♦ ♦ 35-33,5 35-33,5 35-33,5

В. Нативная АТФаза 114 дней) 5Е6 208 2й10 1д01 1дб1 1д®1 6,71 • 10? 5,13-107 8,10 • 107 - <■ - 90-48 90-33,5 90-48

С. Денатурированная АТФаза ПА дней) 7С8 704" 8В8 6В6 8Е2 2С7 5Рб 1961 1д<И 1дб1 № 3,20-198 1,80 • Ю7 3,80 • 10б 1,25 • Ю7 7,7о • !07 6,19 - Ю7 549- 107 / - * + + - + -V 90-48 90-48 90-48 90-48 35-33,5 90-48 90-48

Д. Фрагмент 53 кДа (36 дней) Р5 09 !дСч Г, 90-106 4 65- 106 не исследовалось не исследовалось -

Рис.I. Взаимодействие моноклонального антитела 208 с препаратом зретрощтгарннх мембран и очищенной Са^+-АТРазой. с- белки-маркеры • молекулярной массы, 1,3-. препарат белков эритроцитарной мембраны, окрашенный соответственно амидо черным и при помощи антитела 208, 2,4- очищенный фермент, окрашенный соответственно, амидо черным и при помощи антитела 208

в пользу того, что ашттопы всех коноклональных антител, за исключением одного, принадлежат участкам структуры, характерным для Сас+-АТФазы.

ГЬсле определения основных характеристик ыкАТ представлялось целесообразным выяснить возможность их использования для идентификации Са2+-насоса в различных тканях млекопитающих, что является большой проблемой из-за незначительного содеркания

фермента в мембране. Эксперимент проводили ка зрительных клетках, р>+

где ранее Са" -АТФаза не бала идентифицирована. Антитело 2Д8,

наиболее интенсивно выявлявшее Са^+-АТФазу в суммарной фракции белков мембран эритроцитов, использовали для иммунотестирования препаратов плазматической мембраны и мембран дисков наружных сегментов палочек сетчатки быка. С белками мембран дисков антитела на взаимодействовала. В препарате плазматической мамбраны антитела выявляли только две белковые полосы М. и. 140 и 124 кДа. представляющих собой соответственно интактный фермент .и продукт его протеолнтичесхой деградации. Таким образом, Са^+-АТФаза впервые была иденп-йицировака в зрительных клетках млекопитающих.

2. Влияние лоноклаюхъшс антител на функциональные свойства ферлеюпа.

Моноклоналышэ антитела также когут быть использованы для изучения функциональных свойств ферыента, взаимного расположения к взаимодействия его функционально-важных участков. С цель» выявле-кия антител, влияхада на активность Са^-насоса, проводили измерения базальной и кальмодулин-зависииой АТФ-гадролазной активности Са -АТФазы на очищенном солюбилизированнои препарате фермента после предварительной инкубации со специфическими антителаыи и нормальными иммуноглобулинами мыши (последние использовались в качестве контроля). Было показано, что в результате взаимодействия с антителом Е5, полученным против кальмодулин-связывающего фрагмента 53 кДа, происходит уменьшение чувствительности Са -АТФазы к активирующему действию кальмодулина. Это антитело использовали для сравнительного кммунохиыического исследования ряда других кальмодулин-зависимых белков: протеинкинады ii, киназы фосфорилазы и фосфодиэстеразы. Антитело г 5 обнаружило кросс-реактивность по

отношению ко всем исследованным ферментам, что свидетельствует о существовании сходных участков структуры в регутшторных областях этих белков. При этом ингибиторный эффект антител проявляется только в процессе взаимодействия с Са~+-АТФазса и гтротеинкиназой xi. Результаты эксперимента приводятся в табл. 2. Однако, несмотря ка эти интересные данные, не представлялось возможным локализовать эпитоп - шшень моноклонального антитела Р5, вследствие о'гсутствкя связывания антитела с денатурированной Са^+-АТФазой. Очевидно, что - з гштоп - мишень данного антитела является конфоркационным.

Таблица 2. Влияние моноклонального антитела Г5 на калькодулкн-зависикые ферменты.

Фермент

Актгзностъ С ерш)

Базальная

F5

4- F5

В присутствии кальмодулина

- F5

+ F5

Са2+-АТФаза протеинкиназа ii фосфодиэстераза киназа фосфзрилззьг

8400 2800 1800 4850

9100 2750 1820 5100

56230 10050

48S00 3210

3I8I0 27100

15330 12750

ЬЬноклональное антитело- 7са, полученное после иммунизации денатурированным ферментом в растворе (протокол с), вызывало увеличение базального и кальмодуяин-зависнмого компонентов активности фермента соответственно в 2,5 и 1,3 раза. После точной

локализации эпитета, распознаваемого антителом 7С8 возможно его использование в функциональных исследованиях Са^+-АТФазы. Остальные антитела не оказывали влияния на АТФ-гидролаз ную активность фермента.

3. Анализ распределения эпьтопов в полипептвной цепи белка.

Картирование зпитопов в полипептидной цепи белка проводили на

Oj.

продуктах ограниченного гидролиза Са -АТФазы трипсином. Выбор триптического расщепления для решения поставленной задачи объясняется тем, что ранее была изучена кинетика образования триптических фрагментов и определены их N-и С-концевые координаты. Ограниченный протею лиз Са^+-АТФазы трипсином приводит к образование целого ряда высокомолекулярных фрагментов- 00, 85, 81, 76, 48 кДа к более низкомолекулярных- 35 и. 33,5 кДа. Высокомолекулярные фрагменты фермента образуются в результате последовательной деградации полипептида 90 кДа, расположенного в границах 3I5-II6I. Фрагменты 35 и 33,5 кДа, происходящие из N-концевой области молекулы не имеют участков перекрывания с полипептидом 90 кДа. В эксперименте по картированию элитопов были подобраны условия получения гидролизата, содержащего возмогло более полный набор фрагментов .АТФазы, затем проводилось электрофоретическое разделение полипептидов в полиакрилакиднем геле с последующим переносом на нитроцеллюлоз ную бумагу. Нитроцеллюлозние реплики, содержащие набор фрагментов фермента, инкубировали с различными моноклональными антителами. Такое картирование позволило выделить три группы антител: I. Антитела, связывающиеся с высокомолекулярными фрагментами

ю

от 90 до 48 кДа.

II. Антитела, взаимодействующие с фрагментам 35 и 33,5 кДа. (к этой группе относится ионоклональное антитело 1Е4, участок связывания которого, как было показано, ориентирован в межклеточное пространство.)

III. Антитело 2D8, связывающееся как с полипептидами 35 и 33,5 кДа, так и с высокомолекулярными фрагментами.

Даннис по картированию эпитопов приведены в табл.1.

4. Изучение яранслелбранной организации СО2 -ЛФазы.

Определение полной аминокислотной последовательности •

ЛТФазы эритроцитов человека открыло путь к исследованию транс-иембранной организации этого фермента. На основе, расчетов профиля гидрсфсбносги белка было предложено несколько гипотетических моделей укладки полипептидной «епи молекулы Сз2+-АТФазьг в мембране, отличавшихся количествам и расположением трансмембранных тяхей В этой связи особое значение приобретает экспериментальные данные топографических исследований фермента. Одеты из инструментов такого рода исследований могут служить моноклинальные антитела.

4.1 Определение ориентации эпитопов Са^*-АТФазы относительно плазматической мембраны.

На начальном этапе топогра&гческих кссагздованиД необходимо бьшо выяснить с какими участками гягегрального белка-внеклеточными, цитоплазыатическими или внутримембранными-связавается каждое конкретное антитело. С этой цель» изучали взаимодействие нококлональных антител с интактныш эритроцитами

человека и инвертированными эритроцитарными везикулами. Образование иммунных комплексов детектировали с помощью радиоактивно меченных 1251 вторичных антител. 9 из 14 антител связывались с инвертированными везикулами и лишь одно антитело IE4 взаимодействовало с интактными эритроцитам! (табл.1,). Результаты эксперимента свидетельствуют о том, что эпитоп, распознаваемый антителом IE4, расположен на внешней поверхности клетки, а участки связывания девяти других антител ориентированы в цитоплазму. Вопрос о локализации эпитопов - мишеней четырех ккАТ, не связывавшихся в эксперименте ни с интактными эритроцитами, ни с вывернутыми везикулами, остается открытым. Отсутствие взаимодействия может объясняться, с одной стороны, экранированием эпитопов близлежащими белками или фрагментами самой Са^+-АТ$азы, с другой стороны, тем, что эпитопы находятся во внутримекбранных сегментах полипептидной цепи белка.

4.2. Локализация эпотопа в наружной облаете молекулы фермента.

Поскольку было показано, что в созданной коллекции моноклональных антител имеется единственное антитело (1Е4), взаимодействующее с Са -АТФазой с внешней стороны клетки, то представлялось целесообразным как можно более точно локализовать эпитоп - мишень данного антитела, и тем самым получить первые экспериментальные данные о структуре внеклеточной -области молекулы фермента.

Прежде всего взаимодействие антитела 1Е4 с интактными эритроцитами было изучено более подробно. В качестве отрицательного контроля использовали 1дм мыши С sigma) и

я

моноклональное антитело 1G2 С . характеристика данного антитела

приводится в табл. I). Эритроцитарную суспензию инкубировали с

различными концентрациями антител.- Связывание антител с клетками

1

детектировали с помощью х меченых иммуноглобулинов овцы против

igM мыши. Полученный результат представлен на рис.2. В случае

антитела 1Е4 была получена типичная кривая насыщения, тогда как

для антитела 1G2 наблюдалось лишь незначительное увеличение

связывания при повышении его концентрации. Эти данные

свидетельствуют о специфичности взаимодействия антитела 1Е4 с

интактными эритроцитами. Для ~с;;азатеиъства того, что контрольное

антитело 1G2 способно связываться со своим эгаггопом так ss

эффективно как антитело lEi, был проведен эксперимент аналогичный

вышеописанному, но на эритроцитарных мембранах. Как показано на

Р+

рис. 3, взаимодействие обоих антител с Са -АТФазой в данном случае иог.ет быть описано кривыми насыщения.

В экспериментах по картированию элитопов на фрагментах ограниченного гидролиза Са2+-АТФазы трипсином было показано, что антитело 1Е4 взаимодействует только с полипептидами 35 и 33,5 кДа. Ранее было установлено, что N-концевой аминокислотой фрагмента является GjLu ¡19), а с-конец, вероятнее всего, имеет координату -312. Такта образом с самого начала область локализации эпитопа -мишени 1Е4 могла бить ограничена координатами 19 - 312.

Для более тонкой локализации эпитопа проводили исчерпывающий гидролиз очищенной Са2+-АТФазы стафилококковой протеазой V8, йодозобензойной кислотой и химотрипсином. Так как после каждого расщепления ожидалось получение мелких полипептидов, то смесь фрагментов разделяли электрофоретически в Tricine-SDS-системе и переносили методом электроблоттинга либо на нитроцеллюлозные фильтры (для иммунотестирования), либо на pvDF-мембраны (для

в

а. и

30000

20000-

10000

; [1дМ], рд/т!

Рис. 2. Взаимодействие коноклональных антител с интактнши эритроцитами.

Е а

40000

50000-

20000

100С0"

1ЕД Ю2

I I

0 20 40 60 80 100 120

Рис.3. Взаимодействие моноклональных антител с тенями эритроцитов.

структурного анализа). В случае протеазы чъ ни один из фрагментов, перенесенных на нитроцеллюлозу, не взаимодействовал с антитело«. Обработка АТФазы йодозобензойной кислотой дала только один фрагмент С У. и. 16 кДа), взаимодействующий с антителом 1Е-5, н-концевув последовательность этого фрагмента после электроблот-тинга на РУОР-иембрану определить не удалось, вероятнее всего по

ч

причине того, что л-конец фрагмента блокирован. Химотрюттическзй гидролизат содержал несколько фрагментов, выявлявшихся при иммуно-тестировакии с помотъя гигоггела 1е4. Два низкоиолекулярных фрагмента (М.м. 13,5 и 8,8 кДа) были подвергнуты деградации по Эдману после переноса на рупг-кембрану. Их Ы-концевые последовательности совпадали и соответствовали участку Иу (81) -ьуз (89) -ьрмса 4 изоформы Са^+-эритроцитов человека.

Дальнейшее уточнение эпитспа, распознаваемого антителом 1Е4, проводили с помощью синтетических пептидов. Так как эгоггоп был локализован в пределах фрагмента 8,8 кДа, синтезировали следующие три пептида, моделирующие предсказанные внемембранные участки молекулы Са2+-АТФазы: I) в1у(31)-с1и<99), 2) А1а(136)-С1и<152!, 3) рье(121)~С1и(152). Последовательности пептидов соответствуют ьрмса 4 изоформе фермента (рис.4). Способность каадого из пептидоз связываться с антителом 1Е4 исследовали с помощью стандартного иммуноферментного метода и конкурентного анализа. Пэптид 3 взаимодействовал с антителон, поэтому на основе его аминокислотной последовательности были синтезированы два более коротких пептида: 4) рье(121!-Уа1(135) и 5) С1ц(130)-С1и(142). Так ге было изучено взаимодействие антитела 1Е4 с пептидом туг (127) -Ии (156), синтезированным на основе структуры ЪРМСА 1Ь изоформы Са^+-АТФазы, и гомологичным участку рье(121)-с1и(152) ьрмса 4

УГСННУГРРККРКТГЬЕЬУНЕАЬ0О\ГГЫХЬЕ1АА112ЬУЬ Б ЬРМСА«

А

110

|| ^И!

ГХКРАОЕЕИЕЬССО'^ЛТТРЕ13ЕМЕАСА2Н1ЕСйДХ1<2'2У11 ЬРМСА! 130 НО 15о 160

2

130 140 150 160

Рис. 4. Синтетические пептиды, использованные для локализации

?+

наружного зпитопа Са -АТФазы эритроцитов.

изофорщ. Результаты конкурентного анализа представлены на рис. 5. Пептид 2 взаимодействовал с антителом с низкой аффинностью, тогда как пептиды I, 4 и 6 не проявляли способности к связыванию (кривая, полученная для пептида 4, » не приводится, чтобы не перегружать рисунок). Слабое взаимодействие , антитела 1Е4 с пептидом 2 может объясняться тем, что последний содержит частично разрушенный зпитоп - мишень данного антитела. Пептиды 3 и 5 связывались с антителом 1Е4 с "высоким сродством, что дало возможность локализовать соответствующий зпитоп в пределах последовательности из 13 аминокислот: 01и(130)-01и(142) и таким образом зафиксировать положение первой наружной петли молекулы

120

Ьотраипп апЯдгг», рМ

Ряс.5. Конкурентный ананлиз взакмодействия синтетических пэатадоз с монокленаяьншл антителом 1Е-4.

Са^+-АТФазы (ряс. 6). Важнее значение также имеет факт отсутствия взаимодействия антитела 1Е4 с пептидом 6. Это указывает па то, что данное антитело является изо&>рмспецис£агчным.

5. Получение изофорлепеиифичньа: антител и их характеристика.

В настоящее время известии две изоформы Са^+-АТФазн эритроцитов человека: I) Ьрмса 4 изоформа, которая является преобладающей и состоит иэ 1205 аминокислотных остатков; 2) ЬР.мса 1Ь минорная изоформа, содержащая 1220 остатков. Последняя отличается тем, что включает в себя участок фэсфорилирования

№ОкШ65Ю/81кО

?+

Рис.6. Схема пространственной организации Са -АТФазы в мембране.

цАЫФ-зависикой протеинкиназой. Создание изоформспецкфичных антител представляет собой весьма сложную задачу. В данном случае наиболее продуктивной является иммунизация чсинтетическими пептидами, соответствующими уникальным участкам структуры белка. Поэтому для получения антител к минорной изоформе Са -АТФазы в качестве антигена использовали синтетический пептид, моделирующий участок , фэсфорилирования (фермента цАМФ-зависимой протеинкиназой С аминокислотные остатки 1153-1180). '

Поскольку антипептидныэ антитела часто обнаруживают кросс-решстквность по отношению . к различным белкам, то было изучено их взаимодействие с препаратами очищенных на+,к+-АТФазы из

почек свиньи, н+-АТФазы датохондрий сердца быка. родопсина зрительных клеток, а также с пептидами, синтезированными на основе структуры этих белков. Лишь несколько' гибридных клонов продуцировали антитела, не обнаруживающие перекрестных реакций с другими белками. После двукратного клонирования этих гибридом ¡методом лимитирующих разведений был выбран единственный клон юн, имеющий одинаково высокую аффинность как по отношению к петтяу-антигену так и к денатурированной Са2+-АТФазе (К д = 3,0»10®,

Таким образом: в нашей коллекции яйсвтсл ышоклональные антитела к обеим изоформам фзриента. Это ккАТ юн, полученное после иммунизации синтетическим пептидом, соответствующим участку фюсфорнлирования, и ккАТ 1Е4, спеш»445ЧНОЭ к Ьрмса 4 изоформэ. Д«я оценки возможности детектирования изсфори Са^+-АТФазы с помощью полученных антител препарат очищенного солюбилизировэн.*!гго фермента подвергали электорофорезу в полиакриланиднон гсл», затеи переносили методом электроблоттинга на нитроцеллюлозные фильтры. •Нитроцеллюлозные полосы, содержащие иммобилизованный фермент, инкубировали с различными ыонеклональныыи антителами: звз, 1Е4, 1g11. Образование иммунных комплексов детектировали по стандартной методике имиуноблотгинга. Результаты эксперимента ггредстазлени hi рис.7. Как видно из рисунка, антитела 1Е4 и ЮН связываются с белковыми полосами имеющими различную электрофоретическуз подвижность. Антитело 8BS, взятое в качестве контроля, окрашивает значительно более широкую область, чем кагдое из изоформспецифнчных антител. Это дает возможность предположить, что антитело 8В8 взаимодействует с обеими изофорыами фермента. Таким образом была показана возможность детекции изоформ с помощью монокпональных антител. Предполагается

использование этих антител для разделения изофзрм фермента методом аффинной хроматографии, "с целью изучения их функциональных особенностей.

«До

200- r-Ti :' S

ы

115 - 1

97 - i 1

65 - •

43 - ■ i -

1 2 ! 3 1 . • 4

Рис.7. Взаимодействие коноклоналыпи антител с препаратом очкце-ной Са2+-АТФазы. I- препарат АТФазы, окрашенный адгздо черным, 2, 3. 4- препарат АТёазы, окрашенный соответственно при помовд: антител 888, 1Е4, 1011.

выводы

1. Создана коллекция ионоклонаяъных антител к Са2+-АТФазе эритроцитов человека, и проведена характеристика этих антител.

2. Исследовано влияние моноклональных антител на функциональную активность фермента.

3. Разработан подход к определению ориентации зпитопоз антител относительно плягп'лтггг&ской мембраны, выявлено 9 антител к

.цитоплазматическии доменам молекулы фермента и одно (1Е4) - к наружному участку Са^-АТФазы.

4. С покопаю антитела 1Е4 участок 130-142 полипептидной цепи локализован на внешней стороне, плазматической мембраны , и предложена модель трансиембранной организации я-концезой области молекулы Са2+~АТФазы.

5. Предложена методика детекции и разделения изоформ основанная на использовании изофоркспецифичных антител.

6. С помощь» антител идентифицирована Са2+-АТФаза в плазматических мембранах наружных сегментов палочек сетчатки быка.

Основные результаты диссертации изложены в следующих публикациях.

1. Северин С.Е., Луценко С. В.. Фещенко М.С. Связывание синапсина I из мозга человека с калъмодулиноы и тубулином. - vii Всесоюзный симпозиум по химии белков и пептидов, Таллинн, 1987, стр.100.

2. Фещенко М. С., Зварич Е. И.Шахпаронов Ы. И. Исследование стру1сгурно-функциональных свойств Са^+,Ид^+-АТФазы эритроцитоз человека с помощью моноклональных антител. - vxr Всесоюзный симпозиум по химии- белков и пептидов, Таллинн, 1887, стр.126

3. E.I. Svaritch, M.S. Fescher.kc, M.I. Siiakhparonov. Arrangment of functional doaairi3 in the polypeptide chain of human erythrocyte membrane Ca" -ATPase. - First Spanish-soviet congress of physical chsiuical biology, Granada, 1987, p.22.

I. Зварич E. К , Фещенко U. С., Шахпаронов Ы. И., Шдянов Н» Н. ifcc-

Р-ь 2+

ледование стругстурно-шункциональкой организации Са ,Ug - АТФазы мембран эритроцитов человека. - Тезисы докладов хи Всесоюзного соБеданм по транспортным АТФазам, Иркутск, 1087, стр. II

5. Луценко С. В. , Зварич Е. И., Фещенко IL С., Шахпаронов Ы. И. йдгунологические свойства кальмодулкн-зависимой протеинкиназы IX (киназы II) из мозга крысы. Тезисы докладов XII Всесоюзного совещания по транспортным АТФазам, Иркутск, 1987, стр. 26.

6. Shakhparonov M.I., Zvaritch E.I., Feschenko M.S. , Modyanov N.N.

2+

Huaan erythrocyte membrane Ca -ATPaae. Immunochemical study of the molecular organization. International symposiua on molecular basis of biowembrane transport, Rosa Marina, Italy, 1988, p.82.

7. v.yu. Alakhov, H.N. Modyanov, M.I. Shakhparonov, E.I. Zvarith, M.S. Feschenko , and S.V. Lutzenko. Elucidation of conservative elements of calnodulin-dependent enayraes with the use of

monoclonal antibodies. - Biotechnology and Applied Biochemistry, 1988, v.10, p.319-325.

8. Зварич E. И., Фещенко 11 С., Шахпаронов li. И. , Модянов Н. Н. Са^+-АТФаза мембран эритроцитов человека. Исследование молекулярной организации. - Тезисы докладов V Советско- Швейцарского симпозиума "Биологические иэбраны: структура и функции", Рига, I9S3, стр.71.

9. Feschenko M.S., Zvaritch E.I., Klinenko A.S. Immunochemical studies of human erythrocyte Ca ,i-5g -АТ£азе. - Intrnaticnal syraposiura "Molecular organization of Molcgical structures", Moscow, 19ЯЭ, p.4.

10. M. Fesclienko, E. Zvaritch. Production of. s-cnoclcna.v antJbo&i*;-« and epitope mapping of the hruaan eryc'irc-syta Ca*4'-ЛТРз-ге. SovenXh international conference cf young ecieailcto c.i t-r-jauic and biological che!ei3try, Varna, Bulgaria, 1290, p.70-72,

11. Фещенко У. С., Зварзгч Е.И., Шахлароиов H.1L Нсолэдсзание молекулярной организации Са~+-АТФазы эритроцитов. Ижуиолсгяческий подход. - Всесоюзный симпозиум "Хюди белков", Тбилиси, ISOO, стр. 159.

12. Фешенко 1LC. , Зварич Е.И., Шахпаронов li.lt, Модяксв Н,К.

рл.

Антигенные свойства Са -АТФазы эритроцитов человека. Биологические мембраны, 1991. т. 8, N 12, стр. 1237-1247.

13. M.S.Feschenko, Е.X.Zvaritch, F.Hofraann, M.I.Shakhparonov, N.N.

Modyanov, T.Vorherr, E.Carafoli. A monoclonal antibody recognizes

an epitope in the first extracellular loop of the plasina membrane 2+

Ca -pump (submitted).