Комплексная переработка продуктов производства триптофана микробного синтеза тема автореферата и диссертации по химии, 02.00.10 ВАК РФ

НАЦИОНАЛЬНАЯ АКАДЕМИЯ НАУК КЫРГЫЗСКОЙ РЕСПУБЛИКИ

Институт химии и химической технологии

П" м .

На правах рукописи УДК 547.757:547.46 6:663.1 66.087.097

ПРОХОРЕНКО ВИКТОР АЛЕКСАНДРОВИЧ

КОМПЛЕКСНАЯ ПЕРЕРАБОТКА ПРОДУКТОВ ПРОИЗВОДСТВА ТРИПТОФАНА МИКРОБНОГО СИНТЕЗА

02.00.10 - Биоорганическая химия, химия природных и физиологически активных веществ

02.00.04 - физическая химия

Автореферат диссертации на соискание ученой степени кандидата химических наук

Бишкек 1997

НАЦИОНАЛЬНАЯ АКАДЕМИЯ НАУК КЫРГЫЗСКОЙ РЕСПУБЛИКИ

Институт химии и химической технологии

На прзгах рукописи УДК 547.757:547.46 6:663.1 66.087.097

ПРОХОРЕНКО ВИКТОР АЛЕКСАНДРОВИЧ

КОМПЛЕКСНАЯ ПЕРЕРАЕОТ^СА ПРОДУКТОВ ПРОИЗВОДСТВА ТРИПТОФАНА МИКРОБНОГО СИНТЕЗА

02.00.10 - Биоорганическая химия, химия природных и физиологически активных веществ

02.00.04 - физическая химия

Автореферат диссертации на соискание ученой степени кандидата химических наук

Бишкек 1597

Работа выполнена в Институте химии и химической технолога Национальной академии наук Кыргызской Республики.

НАУЧНЫЙ РУКОВОДИТЕЛЬ: кандидат химических наук, старший

научный сотрудник Т.И.Стручалина

НАУЧНЫЙ КОНСУЛЬТАНТ: доктор химических наук,

профессор В.В. Котов

ОФИЦИАЛЬНЫЕ ОППОНЕНТЫ:

доктор химических наук, профессор П.П.Гладышей член-корр. НЛН Кыргызской Республики, доктор химических наук С.В.Блешинский

ВЕДУЩАЯ ОРГАНИЗАЦИЯ: Воронежский государственный

университет ■

Защита состоится " ^ * февраля - в часов на заседай!

Специализированного Совета Д. 02.95.41 в Институте химии и химическ( технологии Национальной Академии Наук Кыргызской Республики по адрес г. Бишкек, проспект Чуй, 267

С диссертацией можно ознакомиться в библиотеке HAH Кыргызск! Республики (г.Бишкек, проспект Чуй, 265а)

Автореферат разослан "_ января 1997 г.

Ученый секретарь Спецвализкрованного Совета, кандидат химических наук

Ахматова Ж.Т.

ОЩЛЯ XAPiKTStEn-Xl PASCTJ

Актуальнее?;.

Расслряпциеся потребности в бнологнчески активных взщест-í, в частности в Ь-триптсфане, требуят совершенствования ттроцес-з пх получения. Как незаменимая а-:ияокнсдота триптофан, подвер-юь слошюму промежуточному обмену, образует метаболиты, необхо-ше для Функционирования различных систем организма. Недостаток i отсутствие триптофана в оргаитзта человека и гкпвотгшх ведет к шитию катаракты, поллагрн, псмутнегош роговица глаз, анемия, тени» зубов. Он регулирует функция эндокр-'ного аппарата, гравленную на синтез гемоглобина. Триптофан является предиест-¡гаком витамина РР з организме. На стациях его превращения обра-'Тся серотошш, на этом основано примэнешга препаратов, содеряа-; триптофан для запета Функции козга в зонах гговыгювпсЗ ¡нации.

В сельскохозяйственном производства триптофан - незагангсгыЯ понент в балансировании кортов. На опытной установке Скдшекского завода антибиотиков (ОПУ ) Институтом ВЫШГэкетина был отработан ош-пга-прстйЕшнный ре-мент получения L-трпптофака путеи глубинного спрашивания кикро-териЯ; обобщена научная инфорлэдкя по штачмам-продуцентям и ообмештам хронзтогра|ич9сккм методам его извлечения из культу-ьных глдкостэа (КЯ). Несмотря на пмэ:сцкйся опнт по вндэлокию нокисло? из природных объектов и КЗ, установлено, что значимая часть их остается в отходах, в несколько раз превышавших еш целевой аминокислота. Поэтому исследования по физико-ическоЯ переработке отходов и вторичных продуктов аминокислот-о производства актуальны как для создания экологически безопас-, малоотходных технологий, так и в плене получения Сиостгмуля-ял добавок.

Цзлъ и садстч исслодсязхпл.

Цель данной работа заключалась в оамргонетвсвлЕии технолопш злексной переработки продуктов производства триптофана еткроса-шческж.! синтезов: использование злектромэнброкных процессов и гчение трилтофансодергаиих кормовых бяостхгтудяторов. Для рекення исследуемой проблем* необходимо било: хЗрать !'этод количественной оцэшсл псслэдуог/нх продуктов на со-

дервание триптофана;

исследовать влияние соляной кислоты на устойчивость триптофана солянокислый гидролиз К£ для дополнительного извлечения трипт фана;

определить содержание триптофана и аминокислот в продуктах к отх дах технологических стадий его микробиологического производства; разработать способ деминерализации осадков биомассы триптофг методом электродиализа с ионообменными мембранами и перевода каа ция из нерастворимого состояния в СаС12;

исследовать взаимное влияние катаонитовой мембраны МК-40 и трит Фана;

на основе результатов исследований дать рекомендация к сонерп« стзованию действующей технологии микробиологического производс триптофана и комплексному использованию отходов и полупродуктов

Научная новизна.

Исследованы закономерности мембранного переноса при электро. ализе растворов смеси аминокислот триптофана, лизина и глутамиз вой кислоты. Определены абсолютные значения чисел переноса и зависимость от изо электрических точек амшокислот.

Впервые установлено каталитическое воздействие катаонито: мембраны в водородной форме на процессы превращения триптофана индолпроизводпых. Изучен механизм взаимодействия триптофана катаонитовой мембраной ЫК-40. По результата*.! исследований, лове ность мембраны, насыщенной триптофаном, и мембраны после десорбции претерпевает значительные изменения, установлен эфф расклинивания мембраны и увеличение числа дефэктшх отверстий.

Детально кзучэн процесс деминерализации осадков биомасса тр тофана электродиализом с ионктовыыи мембрана:®. В результате р работай электроызмбранный способ переработки осадков биомасс, п болящий кальций из нерастворимой фосфатной формы перевести в х рид кальция. Оптимизирована условия проведения электродиализа С массы с ограничением рабочей канэра катионитовымл мембранами 40, позволящне осуществить полный лизис условно-патогенных миг организмов и получить из бросовой биомассы продукт с внсс содержанием а.2шокислот.

Исследовано влияние солянка;алого гидролиза КЕ на выхо. устойчивость триптофана, что дает возможность прогнозировать I

;эсс извлечения триптофана в условиях производства.

Изучен аминокислотный состав корявых форм триптофана на эснсве маточных растворов кристаллизации триптофана п КЖ с раста-гелышми наполнителями. Показана количественная зависимость аминокислот в кормовых биостимуляторах от вида наполнителя.

ДиФ^р81щировашд,1 кондуктометрнческим титрованием триптофана растворами солей-компонентов 1С! определено изменение электропроводности модельного раствора, что мозет бить использовано для расчета балансовых потерь аминокислот па технологической стадии осаждения биомасс из КН.

Прь:стнчес::с9 значение роботы.

Изучение закономерностей электродяаллзЕой деминерализации осадков биомассы триптофана, являющихся обременительным отходом микробиологического производства, позволило дать научную основу для разработки нового технологического решения по извлечет!» кальция из нерастворимого состояния и его возврата в виде хлорида з основное производство. В результате разработан электрсмембрзшшй метод переработки биомассы и получения обеззараженного продукта о высоким содержанием аминокислот (до 36%). Технология апробирована в условиях опытной установки по производству аминокислот БЗА.

Найдены оптимальные условия солянокислого гидролиза культу-рзльной жидкости триптофана. Этил способом получена опытная партия корнового биостимулятора с растительным наполнителем. Проведенные эксперименты по токсико-биологической оценке указанных препаратов показали их безвредность.

Подобраны условия раздельного определения триптофана в смеси аминокислот электрофорезом и ВЭЖХ, позволившие разработать программно-аппаратный комплекс идентификации аминокислот.

Результата исследований по влиянии катлонлтовой мембраны: МК-40 на превращение триптофана оформлены в виде технологической инструкции проведения процесса получения триптофана на ОПУ БЗЛ (27.10.S3r).

Определены возможно пути утилизации продуктов после кристаллизации триптофана, выделенного ионообменным хроматографированием из продуктов микробного синтеза. Разработан способ получения кормовых биостимуляторов на основе маточных растворов кристаллизации я КЗ.

По Республиканским планам внедрения на ОПУ по производству аминокислот БЗА наработаны опытно-промышленные партии кормовых биостимуляторов, внедренных в хозяйствах Республики для обогащения растительных питательных гранул и кормосыесей. Результаты подтверждены актами испытаний и внедрений. Материалы диссертации по аминокислотному составу отходов и полупродуктов использованы для гае-еиптя изменения в технологию производства триптофана по получению кормовых $орм.

Результаты по деминерализации осадков биомассы взяты за основу при разработке рабочих чертежей пилотной электродиализной установки с ограничением рабочей камеры катионптовыми мембранами.

Автор защищает

1.Совокупность результатов исследований переноса триптофана, лизина, глутаминовой кислоты из модельных смесей через ионитовыэ мембраны при электродиализе.

2.Электромембранный способ переработки осадков биомасс триптофана, полученных на стадии тепловой и химической обработки КЖ солями кальция и ортофосфорной кислоты.

3.Модифицированные методы определения триптофана электрофорезом и анализа его, включалцкй предколоночную дериватизацшо исследуемых растворов о-фталевыы диальдегидом с последующим определением производного на обрагценно-фазовом сорбенте высокоэффективного жидкостного хроматографа "Милихрстл".

4.Технологическую схему комплексной переработки отходов и полупродуктов микробиологического производства триптофана.

Дпрсбацця ргбсты

Материалы исследований бшш представлены на Всесоюзной конференции "Хпмиа и технология редких, цветных металлов и солей" (г.Фрунзе,1986), Республиканской . конференции колодах ученых (г.Срунзе, 1985), IX Ыеареспубликанской научной коференции молодых ученых (г.Срунзе, 1938г), 1£еддунарадяом сшпозкумо ВЭлХ протеинов, пептидов, полинуклеотвдов (ФРГ, г.Ыайяц,1905), Всесоюзной конференции "Аминокислоты для сельского хозяйства, пищевой промышленности, медицины и научных исследований (г.Ереван,1983), на Региональной сессии Республик Средней Азии и Казахстана Научного совета по хршатографзи АН СССР (г.Чолпон-Ата,1991), на годичной сессии Научного соЕЭта по 2роштогра£2Щ РАН (г.Москва, 1933),

юероссийской конференции "Физико-Еигичесниэ основы к прат.яеское римененке ионных процессов" (г.Воронэг, 19S3).

Публлкацна.

По материалам диссертации опубликовало 4статьи, 1 препринт,7 'езисов,

фэрпено 2 научных отчета о НИР в ВНТЦ п 1 - рекомендация для млючения в технологический регламент на БЗА.

Структура д сбъем работа.

Диссертация изложена на 149 страницах машинописного текста, -тлгстркрована 32 рисунками и 23 таблицами, состоит из введения, >с5зора литературы, экспериментальной части, обсугщония результатов ¡ссдедованкй, заключения, выводов, списка используемой литературы, ислючаетцего 181 наименование, и приложения

СОДЕГЗАИЗ РЛЕСШ* ГЛАВА I ЛИХЕРАТУТНЫII ОБЗСГ

В литературном обзоре приводятся сведения о значении риптофана и его производных (?rioklebp.nSc "i.D., 1978; Kelly '.F.,1930; Подильтпк М. Д., 1958; СадоЕНТксза М.С.,1977) дан ритический анализ способам получения Ь-трпптсфана (Котова '.А. ,1983; Озереденко В.Г..Стручалина Т.П. ,1983), затронута вопросы олучения кормовых форм различными фирмамя - shosa DenJto, Mitsui oatsu chemioal (Япония), Degussu (ФРГ), АС Biotconio (Швеция), ивановский биохимический завод (Латвия), рассмотрен элоктродиализ ионообменными мембранами в биотохнологических процессах и для «деления и очистки аминокислот (Гребеягсс В.Д.,1976; Гнуспн :.П.,1972; Шапопник В.А.и др.1989; Селеменев В,О.,1991; Котоз .В., 1985; Стручалина Т.'Л. ,Богер А.М.,Котов В.В., 1939).

Ниформационно-СиблиогрзфпескиП ан.ализ опублиховагешх работ Еидетельствует об отсутствии дс-тшх по электрснэмбранной бработке продуктов производства триптофана и получошш кордовых иостимуляторов из вторичных продуктов. Это позволило определить ,елъ и задачи настсдгеЗ работы.

ГЛАВА 2. ЭКСПЕРИМЕНТАЛЬНАЯ ЧАСТЬ Сире деление триптофана

При разработке технологии комплексного использования продукта! выделения триптофана из ферментационных растворов необходим^ располагать различными методами анализа целевой аминокислоты. Определение триптофана спектрофотометрическими методами дл; микробиологических обектов тршггоФаноЕого производства былс смоделировано Е.Р.Рошалем (1982),что позволило повысит! чувствительность анализа аминокислоты и упростить процедуру пс сравнению с известным методом Опъвнскол-Блаут.В данной работе количественное определение триптофана методом прямой спектрометрии пс коэффициенту поглощения в УФ-области Сило целесообразно для модельных растворов.

Е продуктах микробиологического синтеза наряду с триптофаном присутствут сопутствующие аминокислоты. Изменяя рН буферного раствора, напряжение и силу токв, были найдены параметры раздельного определе.ния триптофана в смеси аминокислот методом электрофореза. В фосфатном буерном растворе с рН 5,6 на приборе 0Е-201 при напряжении 500, 600, 7СЮв в течении 60 мин получено разделение смеси триптофана, валина, серина,лизина, лэйцпва и глутамковсй кислоты на Л группы: глутаминовая кислота; триптофан; лизин и суммарно -валин, серин,лейцин.Подобная картина наблюдалась при электрофорезе указанной смеси в ацетатном буфере с рН 3,6 при напряжении бООв и времени 120 мин. В последнем варианте для двухкомпонеятных смесей серии + лейцин, валин + серин, валин + лейцин, триптофан + лейцин и триптофан + серии, четкое разделение аминокислот достигалось для двух последних сочетаний.D универсальном буферном растворе с рН 2,2 при Р = 700в,силе тока 12ма и времени ЭОмин смесь из 8 аминокислот (валин. лизин, глицин, серии, треонин, иэол&Ецпн, глутаминовая кислота и триптофан), хорошо разделяется на 4 группы, при этом триптофан находился ближе всех к стартовой линии. По результатам исследований построены калибровочные кривые количественной оценки триптофана для различных буферов.

Используя отечественный ыикроколононый хроматограф "Ыилихром" с ультрафиолетовым детектором, подобраны . условия определения аминокислот в пиковых концентрациях с использованием фенилизотиоцианата, давсилхлорида и О-фталевого даальдегкда (OPA):

\

+ NH — CH

2 I

\

N II С H

S

илизотиоцианат

ОН"

сооа

+ HCl

NH-C=S I

H-N

R-C-H 1 I

С = 0 I

OH

o=c

I

H-C ■

I

R

C=S

I

NH

(1)

снз снз

0 = S = 0

I

CI

Лансклхлория

CH CH

X3 ' ■>

,m ' PH-9,5 +NH2 - ¿H__S

сооя

о = S

NH - CH -COOH i

H

сно

+ HS"CH2-CH2- OH * H,W - CH.

сно COOH

0 " лиальдогид

»•сн-сн -он (3)

N -CHR -COOH

Хроматографа производных триптофача и снеси аминокислот с О-фп левым диальдегидоы (основание Шиффа; с применением элшрующего ацб татного буфера (рН 6,0) для длины волны 360 км представлен на рис. 1 Возыогяости прибора позволяют одновременно проводить измерения в двз длинах волн 360 и 280 км . Ил комбинацией выяснена конверсия 1--три1 тофона.

Рис. 1. Хрохатограг^а разделения триптофана л друг¡2; аминокислот штодом БЭЗХ

Для расчета ко;-щевтрадэ! аминокислот серийного характера бал сс дан програюлю-опларатный комплекс автоматического контроля и упра ления хроттографои "liuiHxpoiT.

Излученные варианты электрофоретического определена триптофана снеси аюшогаюгэт н информативна материал по программно-аппаратнс комплексу к анализа методом Е32Х Ошш переданы на ОПУ БЗА г включения Е териологический цикл контроля производства триптофана

ГЛАВА 3. РЕЗУЛЬТАТЫ И Ш СЕСУЗДЕЕЗЗ Солянокислый гидролиз КЗ трпптофэнэ

В производстве триптофана микробным синтезом стадия обработки коагулянтами является одной из трудоемких и сопровождается образованием этходов, в несколько раз превышаю^« объем целевой аминокислоты. С делыо увеличения Еыхода триптофана изучено действие кислотного гидролиза КЖ без предварительного осаждения биомассы. Найдено, что при гидролизе КЗ 2н НС1 в концентрации 5, 10 и 20% к объёму обрабатываемого раствора,с подогревом до 27,40 и 60°С и в течение 1-5 ч, лучшие показатели наблюдаются для 40°С при 10Х-ном объеме 2н HCL, зремени гидролиза 2 ч, Содержание триптофана (за счет лизиса клеток) увеличилось с 2,6 до 4,3 г/л. Отрицательным фактором кислотного гидролиза KS является нарастание цветности раствора, влияющего на стадии выделения ■i очистки аминокислоты.

Проведение кислотного гидролиза продуктов содергагда триптофан выявило достаточно высокую стабильность триптофана з кислых растьорах. Исследования на модельных растворах (С - 1г/л) с измерением концентрации L-триптофана на спектрофотометре Specord М40 с интегратором подтвердили, чтс снижение рН раствора аминокислоты с 7 до 5,04 и 1,33 не триводило к значительному распаду триптофана. Логарифм молярного коэффициента (lq^max) составил для рН 1,33 на 12-е сутки 0,1549, на 20 -5,1324 против начального значения - 0,1630.

Результаты оформлены в виде рекомендации по использованию з техно-югическом цикле производства триптофансодерлациз: продуктов различного 1азиачения.

Блаяшэ олэктролдтоа па осаздэппэ бпсаассы л псследсвгппэ со состава

Получение нативных растворов хорошего качества зависит от стадии :еплово(1 и химической обработки культуралькой жидкости, представляющую собой коллоидную систему с остатгаш питательной среды, продугаа-fli жизнедеятельности клеток В производстве аминокислот общепринятым гоагулянтом является фосфат кальция, образукл^йся последовательным

:ием в KS хлорида кальция и фосфатов натрия или ж* гидра окиси кальция и ортофосфорной кислота Проведение балансовых операи показало, что потерн триптофана на стадии тепловой обработки соста ляют 6- 77., на стадии фильтрации 14 -' 35%. Действующа.' регламент производства триптофана предусмотрено осаждение биомассы, ее высуе вакие и захоронение в иламэотвалах. С точки зрения экологии этот сп соб утилизации носит прлродозагрязпящий эффект и вывод из пользов иия земельных участков, кроме того стадия сушки не обезврежива споровую культуру продуцента Bas. subtills.

По составу бросовая биомасса триптофана - ценный органо-минераль продута? - количество азота в нем 2-3%, витаминов группы В - Е -0,С01%; В,- 0,6-0,9%; В,2~ 0,005-0,006%, аминокислот по суше 14.-1 содержание кальция 26-27%, В, О,- 5-7%,марганца -0,07%, присутствую другие макро- и микроэлемента Расчет потерь триптофана на стадии т довой и химической обработки и не совпадающей баланс кальция и фос$ ра свидетельствам,-что аминокислоты и метаболиты KS возможно образ ¡от комплексы с шшералылш солями на стадии осаждения биомасса J установления этого факта проведено измерение электропроводности ь; дельного раствора триптофана при добавлении раствора солей CaCl2,lía Иа2Со3, СаЕ^РОд, NaOH (рис. 2). С точки врения кондуктометр

осаждение биомассы путем пере'вода кальция в нерастворимые фосфа добавлением ортофосфорной кислоты или ее солей можно в равной степе рассматривать itaK титрование сильным основанием смесей амфолитов сильными ^слотами и титрование сильной кислотой смесей амфэллтов сильными основаниями. Уравнения элегаронейтральностн 1а:оюг одни и ке выражения:

М-М+КМ-^М) (к.М«ъКК)} ИЧ - Нэ ы»* - ьс H - -

v.

"И 2 KvК" WKa)- Kw («V +=0

+ a^ - b S s

(4)

(5)

где а - концентрация акфолгта. ноль/л; аз - концентрация сильной кислоты, находящейся в снеси с акфолиток или добавленной в качестве твтранта. =кв/л; - концентрация сильного основания, находящегося в снеси с анфоллток ал к добавленного в качестве тктранта-

о

КОИДУК'ШГРЛММЫ титгоилиии ТРИПТОФАНА

Уравнение выведено из допущения, что коэффициенты активности ионо цвиттер-ионов и незаряженных молекул равны единице. Руководствуяс ионными концентрационными зависимостями и теоретическими кривыми тит рования пс Т. А. Худяковой и обсуждением экспериментальных кривых можн предположить образование на стадии осалдения биомассы комплекта триптофана и сопутствующих аминокислот с коагулянтами и компонентам РЖ, что наряду с другими факторам! возможно влияет на увеличение по терь аминокислот на указанной стадии технологического процесса.

Деминерализация биопасси инкробиолсгеческого синтеза тр;ш?офаЕа электродлькизш с конитоешш иеиЗраняии

Современные состояния экологии требует создания новых эффективны методов утилизации бросовой биомассы триптофана и возврата в произ водство неорганических коагулянтов. С учетом химического состава про дукта и с целью извлечения кальция, перевода солей фосфатов в растворимое состояние был использован электродиалкзатор со специальны: расположением ыеьйран. Злектродиализная обработка биомассы проводилас1 по типу непрерывного ионного обмена, процесс осуи^ствлялся в 3-х секционных элементах электродиализного аппарата ограничением рабоче) камеры одноподяркыми катионитовыш мембранами МК-40. Основными параметрами процесса служили плотность тока 100А/мг, температура - -293К , исходная концентрация биомассы 10-20 кг/м'соляной кислоты- 10,2 кг, Суспензия биомассы, помещенная в секцию 3, непрерывно перемешивалась. Под действием градиента электрического потенциала в секция: концентрирования происходило накопление хлорида кальция (табл.1)

Рис. 2а. Зависимость чисел переноса ионов кальция в мембране (1); степени конверсии (Ю вещества биомассы в растворимые соединения фосфора (2) н кальция: (3)- от времени опыта; (4)- по количеству уделанного из биомассы; (Б)- по сутаэ (плотность тока 100 А/м2); (6)- рн раствора

Таблица I

Результаты электродиализного извлечения кальция из биомассы

Показатели Единица Серия опытов

измерения 1 2 3 4

Время опытов ч 0,500 0,75 1,0 1,50

Количество электричества А.ч. 0,253 0,376 0,522 0,657

Характеристика растворов:

а) центральной секции (с биомассой) значение рН 6,450 5,80 4,450 2,550

концентрация кальция кг/м3 0,645 0,718 0,872 0,936

концентрация Р2О5 кг/м3 0,114 0,120 0,630 0,912

б) секция концентрирования:

значение рН 3,550 3,430 3,200 1,650

концентрация СаС1з кг/м3 4,870 7,260 9,610 11,880

Выход по току кальция % 93,000 96,000 89,800 83,500

Степень перехода з растворимое состояние: фосфора % 10,80 11,30 59,40 86,40

кальция:

— центральная секция (с биомассой) — секция концентрирования 12,20 33,00 13,50 49,30 16,50 65,20 17,70 80,50

С у м м а 45,20 621, S0 SI,70 93,20

■ Найдено, что при электродиалзгае с диполярным расположнием катио-яитовых мембран, выход по току ионов водорода из секции обессоливания ;сставил 99 - 1СО%, падение напряжения - Бв, кальций з реяимэ непрерывного ионного сСмэна на водород переводится в растворимое состояние яа 98%. Из указанного количества до 80Х кальция в виде хлорида мокэт 5ытъ воззрацепо з ссповксе производство. Раствор злэктроднализного ?аСЬд,ка'с показал анаша, отличался еь-сокой степенью чистоты и не со-iep^n аминокислоте табл. 2 ). Сразнителышэ испытания его с хлоридом альция ;.2ркп "Ч" (ГОСТ 4460-77) при осахдепшг биошсоы КЗ лейцина ¡али аналогичные результаты.

Еавискмость числа переноса поноз кальция,' степень конЕерс;я вг-^ества биомассы представлена на рис. 2а.

Таблица 2

Содержание аминокислот (кг/т) в исходном осадке биомассы триптофана .. продуктах электродиализа

Конпертмройа иная биомасса Синтезированный хлорид кальция

Исходная биомасса К амера обсссоливлння Камера концентрирования

Аминокислота - Время электродиализа, мин

Твердая фаза Жидкая фаза Жидкая фаза

30 45 60 90 30 45 60 90 90

Лизин 12,8 9,8 13,0 15,7 13,9 2.9 3,1 3,3 3,2 — ■ .

Гистидии 4,4 4,7 4,7 5,5 5,4 0,4 0,5 0.7 0,7 —

Аргинин 7,8 15,6 17,8 21,9 20,7 7,8 7,9 8,1 8,0 —

Аспирагиковля кислота 15,4 30,7 1 31,8 44,8 40,7. 15,4 . 15,6 15,8 15,0

Треонин 8.2 11,4 7,8 • 16,0. 15,6 3,0 3,1 3,3 3,1 —

Серии 6,2 6.9 10,0 14,2 11,6 2.6 2,7 2.8 2,7 —

Глутамиповая кислота 34,4 51,5 55.7 80,6 68,7 ' 21,0 22,0 24,0 22,0 —

Пролин 5,6 6,6 5,3 8,4 12,8 1,0 4,0 11,2 1,0 -

Глицин 8,7 12,8 14,4 21,6 17,2 8,9 9,0 9,0 8,9 —

Алании 14,8 27,9 28,4 40,9 37,1 13,0 14,4 14,5 14,4 —

Взлин 8,8 13,3 25,2 17,1 12,3 8,3 8,4 8,5 8,2 -г-

Метионин 7,6 9,4 ■10,8 14,6 15,6 2,0 2,1 2,4 2,2 -

Иэолсйцин 13,4 ¡9,4 24,1 32,7 23,2 7,0 8,2 8,3 7,9 —

Лейцин 6,2 6,6 6,9 9,9 . 8,6 1,0 4,0 1.2 1,0 —

Тирозин 6,8 9.5 10,7 15,1 15,3 3,2 3,3 4,0 4,0 —

Сукна -•■•1"скпслэт 171,0 244,8 268,1 369,0 329,6 97,6 101,4 116,9 102,3 -

Экстраполяция линейных закономерностей конверсии кальциевых солей (кривые 3-5) на ось ординат.дает показания показатель, близкий к значению относительной растворимости соединения кальция биомассы (0,12). Ход изменения степени конверсии соединений фосфора (кривая 2) связан с переходом труднорастворимого гидрофосфата кальция в дигидро-фосфат, а затем в фосфорную кислоту. Сопоставление кривых 2 и 6 позволяет сделать выбод, что резкое увеличение степени конверсии происходит при рН менее 5, что соответствует дигидрофосфатной форме знионоз ортофосфорной кислоты. _

Обработанная в элеотродиализаторе биомасса триптофан била исследована на тест бактериальной обсемененности. Установлено, что при плотности шса 100 АЛГсуспензия полностью стерилизуется, что ыояет быть объяснено синергическнм эффектом одновременного присутствия в рабочей камэре ионов водорода и гидроксила.

Д1.ашо!с:сло?ный состав в продуктах бпснассы до :: после элэктродна-лизной обработки свидетельствовал об увеличении ¿¿жюкпелот по сумме с 171,0 до 300,0 кг/т (табл. 2), что позволило вторичное использование зтих продуктов в технологическом цинге для получения кз гвердоД фракции корковых форм, а гзщгой фрагодш как составной 'гаегп . фсруэнтащгашшх ргствороз.

^згсеггл взггаэдейстагз Ь-тртзтс^иа о цкЗйайоа- !"С-!0

Здетародпалнз осадков биомассы триптофана показал перспективность 5того метода в производстве аыипокисло? и исклхг-генкэ строительства гпсцзалыдах плгаэотваггав. Для создания энергетически" ■ ви-'одпого процесса необходимо было выяснить особенности сорбции триптофана па катиояктовой ;.;эг.сбра;'е 1111-40 в статических условиях.

При изучении механизма были учтепы три основных фактора - структура ме.'лбраны, фнзнко-хтягчзскнз свойства тглнггофана и взаимодействие :сл!ггуе1»го раствора с глтериалом мембраны. Эа основу приняты условия рагг.овесгд на границе мэ5.:5рана-раствор (б) , возкккаэдяй Доннановский потенциал (7).

а х а

я а * а (5)

к 1С ,

где: 1 а к —активность электролита з фазе раствора и ионита.

Е -7"- У - - (кт 1д ■ ' - пи,), (7)

Дан I Ж1 1>

где (Г- У) - разность электрических потенциалов соответственно в фазе ионита и фазе раствор^; - валентность иона; Г - число Фарадея;

Р. - газовая постоянная; Т - абсолютная температура;

а к ~а~ - активность ионов в фазе раствора и в фазе

ионита соответственно; П - давление набухания; и -парциальный молярный объем.

Сопоставлением полученных данных сорбции триптофана на катионито-вой мембране ЫК-40 в натриевой и водородной формах при различных р! позволило сделать вывод, что в первоначальный момент при контакте аминокислоты с ионитом происходит обы'-ший обдан, дальнейшая сорбцш осуществляется за счет дисперсионных взаимодействий аминокислоты с матрицей сорбента (рис.3).

Рис. 3 Величина обменной емкости (--триптофана на МК-40 (На'-и Н:)формах в интервале рН от 1 до 12:

1-ЫК-40 в Иа*-форме;

2-ЫК-40 в Н'-форме

2 4 6 8 10 12рН

кодами термографии и теретгравиметрии^определены-, количество влаги, степень ее связанности, а тагав температуры процессоз дегидратации и йес:ру5сц}и катиоаитоаой мембраны МК-40. Сопоставлением хода ин-^гралъных кривых ТГ к шзшнеккец даффер-энцкзльных кривьас ДТА при

сорбции триптофана на ме1,йране ЫК-40 в солены;: ¡-[¿и Н* - формах при различных pH зелены три участка, характеризующих различную степень связанности ьоды с нонитом. Отсутствие достаточно сильных дисперсионных взаимодействий между матрицей меьйрана и триптофаном при различных pH подтверждено методом ИК-спектроскални. Полосы поглощения в области 1813- , 1120 см" характерны для колебания С - 0 э ыеднссоцшфсваных СООЕ группах, полосы С-II связей ( 3000 си") и юти-леновш: групп (83-1 сы") не претерпевали существенных «щиекений.

Таблица 3.

Зависимость изменения' зерен катноиита н дефектных OT2epcrr.fi на мембране MK-4Q а Na- м Н* -фермах при сорбции Ь-триптофанэ и иктермле pH от 1 до 12

Мембрана Размер, мм Площадь, %

зерен дефект- зерен деф. отверстий

ионита ных отверстий форма форма

Na п* Na" Н+

Исходная форма 0,010 0,002 41 — 9,0 —

мембраны н+ 0,010 Q.CD2 — 42 — 9,3

Ph

Мембрана 1 0,007 0,005 39 37 - 22 22

после 2 0,008 • 0,С04 41 37 . 15 21

сорбции 3 0,009 0,003 41 <0 ; 13 19

триптефлпз 4 0,009 о.соз 42 40 11 19

при различных 5-12 0,009 0,002 41 41 11 19

pH

Увеличение рП раствора щяаодгх г. кшгэпиэ ойаю *" «вюиа8 всхедсгк* перехода триптофана з ежэтаауэ фср:г/ п вытеснения его ш: катиона га ю-ярины. Cmram» pH прятодэт к гэдгэшп структуры " гегйракц, сбэзво.-дгжпо и подойей дестрлсцгп!. ^^зет. раскяянзгнна-тйраны отчетливо наблвдался при ¿следовании поверзшсстц"

:-*г(..5рапы на екзлмругзэм ргстрогом митрссетпз. Егпзлено, что пенер^-зость мэыбракы, нссьгцетюй триптофаном, после ого десорбции претерпевает значительные изменения, пр:гб,~!гаасъ к структуре сухей мэ^сани

Десорбкросанная мембрана имеет большую площадь дефектных отверстий по сравнению с мембраной, не контактирующей с триптофаном. Шксимально изменяется структура мембраны при рН-1-2 (табл.3)

Другой причиной увеличения размеров и количества дефектных отверстий на мембране является эффект набухания мембраны в процессе сорбции (рис.4). Величина набухания согласуется с величиной сорбции триптофана при различных рН. При полной десорбции триптофана с мембраны наблюдается незначительное уменьшение толщины.

Рис. 4 Кривые величины набухания ЫК-40, насыщенной I.-триптофаном при различных рН:

1-МК-40 в На -форыэ;

2-ЫЙ-40 в Н'-форые

в

6 4

24

I Г-10'2мм

2 * 6

ё М

11 рН

С целью нормализации функционирования мембраны при электродиализной обработке биомассы, содерлздэй триптофан, процесс необходимо вести в нейтральной области рЕ

Перенос; ашнокислот через ионнтоше ыеьйракз прз электродяалагэ

Конструктивные особенности электродиализатора для деыинерализацю! биомассы, с разьйщэнием обрабатываемого объекта меаду мембранами одинаковой полярности, позволяют добиться практически полного удаления »¿органических электролитов. Для получения данных о поведении трипто-и соаугсгыущ«х ач;шо;<ислот при электродиализе исследованы закономерности игьйршного переноса их из модельных рас-гворов триптофана, диаина и глуташновой кислоты. Исходные концентрации хдоргидратоз аынкокнелог соегайилй и, 034 юль/л. Эксперимент проводился в вест, • секционном ^лларате (рас.а) с расположением мембран, аналогичным для электродиалпза биомассы. Исследуемый раствор ашнокислот помедался в

митральную секции 3, в секции обесеоливания 2 и Б - раствор соляной скслоты, в секц>ш концентрирования и электродные секции 1 и б - дис-.чширосакнал, вода.

Рис. 5 схема электродиалигатора и потоков ионов при электро-диализг: 1-5 секции, А-аниони-говые, К-К£типн1ггобн9 мембраны Н"- протоны, Ак+-!сатиокы аминокислот. Ак-цзиттер-иокн.

3

--©

Основные электро миграционные потоки показаны на рис 6. В результате )де:дродиализа вследствие высокой скорости миграции ионов водорода в са'.шкитоьых №1йранах в центральной секции 3 имело место относитель-.и «хлояьная кислотность (рН изменялся в пределах 1,0-1,3). Это поз-юлидо оценить различие в скорости миграции ионов аминокислот через «¡лбраьы на фоне постоянного потока протонов. Числа переноса I ионов 1 мембранах рассчитывались с помощью выражения:

1=

СУР

ТГ

(8)

где С - конечная концентрация иона, V -объем секции, Г - число Фарздея, 0 - галичэство пропущенного электричества

.зависимость числа переноса ионов аминокислот представлена на рис. б I 7. Абсолютные значения чисел переноса не превьЕшст 0,19, что указывает на преимущественный перенос тока в мембране протонами. Для али-

I

0.10 \

Щй ОН

001

№

0.1

0,1 а) 04 05

Рис. 6. Зависимость чисел переноса ("Е) лизина (1), триптофана (2) а глутамино-вой кислота (3) в мембрана ПК-40 от количества электричества.

Ялу

фатических аминокислот имеет место постеленное уменьшение чисел переноса с увеличением количества электричества, что связано с усилением поляризационных явлений и снижением общей селективности мембран. Пр! этом абсолютные значения чисел переноса ионов лизина гораздо выше, чем ионов глутаминовой кислоты. Такая закономерность обусловлена различием ионных форм исследуемых аминокислот в растворе. При рН равно1 р1 аминокислоты находятся в форме биполярных ионов, которые не могуч мигрировать через ионообменные мембраны под действием злектрическогс поля, однако меджду ними и водой устанавливается равновесие, приводящее к образовании катионов и анионов. Концентрация катионов и анионо! определяется соотношением: [Н'ЗСБЧ ; К.СБП

С6М- К,

где в— концентрация бгаолярных ионов; карбоксильной группы, ногруппы.

СБ"]- СН'] К<- константа

(9)

диссоциаци]

V - константа диссоциации протонированной амн

¿н>

/1СО 90 &О

ю 60 50 40 ¡0 го ¡о

Рис.7. Зависимость чисел переноса протонови) от количества электричества (а) при электродиализе растворов лизина (1), триптофана (2) и глутаминовой кислоты (3).

О,/

02 0} Цк 0$алч

Рас. 8. ЗаЕйскуость концентрации аминокислот в секции обессолнвання (С) от количества электричества (О) при Блектродаалзза растворов лизина (1), триптофана (2) и глутамнноЕоЕ кислоты.

Спи 2.0 1.6 16 и ¡.г ю 0& 0.6 Ол

о.г

1

пою

~щ Щ Ш ш 55 а

Повышенный перенос лизина через мембрану обусловлен в первую оче-здь преимущественно потоком двузарядных катионов. Особые закономер-зсти имеют место при электродиализе триптофана. Экстремальный ход ависимости чисел переноса от количества электричества указывает на зотекание побочных процессов. Качественно это подтверждается выпаде-!ем синего осадка на поверхности катионитовых мембран у отдающей и зинимающей сторон секции 3 и отдающей стороны секции 4. Объясняется збочное явление каталитическим воздействием катионитовых мембран в эдороднсй форме на процессы преьрап^ния триптофана. При этом повы-жная концентрация ионов водорода у поверхности мембраны секции кон-гнтрирования 4 вызывает усиление этого процесса, что выражается в ггенсивности окраски ее поверхности.

Для выяснения причины этого явления мембрана была выдеряана в «створе I*-триптофана и высушена в термостате при температуре 50° С. т контакте с воздухом мембрана окрасилась в синий цвет. Окрашиваю->е вещество по своим свойства),) соответствовало индиго. Эти исследо-шия позволили предположить, что на катионитовой мембране происходит ¡талитическое превращение триптофана по схеме: Ь-триптофан ->индок-и -«-индиго белый -»-индиго синий.

Исследования выявили епе одну закономерность электродиализа амино-

!слот. Анализ секции обесеоливакия 2 показал наличие в ней некоторо-) количества аминокислот (рис 8). Наиболее интенсивный перенос в гкцня 2 наблюдается для глутаминовой кислоты. По-видимому, перенос *, а также тр'штофана осуществляется диффузией цвкттер-ионов, причем инзкуляриая масса, а следовательно коэффициент диффузии его у Глухаревой кислоты кия®, чем у триптофана, что определяет взаимное рас-(ло.'пение кривых. Перенос лизина крайне незначителен и обусловлен >лько диффузией катионов, ослабляемой отталкивающим действием анода, уьелкчением интенсивности процесса повышается скорость потока пророс из секции 2 в секцию 3, направленного против потока аминокис-|Т. Фршщионккэ взаимодействия, возникающие при этом приводят к :еяьсен:по потоков аминокислот, При достаточно больших значениях качества электричества поляризационные явления приводят к снижению лектквности мембран, что выражается в умэнъпютга роли их, как барь-св, и вследствие этого - а поеьезнии переноса аминокислот.

Разработка топотней устапозкп для дешпараянзсцпп суспзпь:::: осадков Оисаасс шкробного синтеза ашакжвслот

Результаты исследования по извлечению кальция из осадков биоиас« триптофана, сорбции и переносу аминокислот через мембраны 1К-40 в лабораторном аппарате, работавшем по принципу непрерывного ионного обмена, явились основанием для разработки черте лей пилотной установки, В качестве основы была взята схема опреснительной электродиализно ЭДУ-400 и пилотно-промышленной установки для выделения авминокисло из их солевых форы и кислых растворов. Пакет ионообменных мембран отличие от указанных имел расположение мембран для рабочей камеры исходным раствором, ограниченной катионообменными мембранами ЫК-40 Для расчета размера камер базовой концентрацией суспензии биомасс была взята 20 кг/ц.3

Кор^огиэ бисстшуляторы кз отходоз е полупродуктов трсшпофадозого производства

В соответствии с Постановлениями директивных органов Кыргызстана

производстве и применении кормовых биостимуляторов для нужд республз ки, были проведены исследования по полученино кормовых концентрат! триптофана. Для этих целей были использованы культуральная жидкое триптофана с упариванием и без упаривания, с" обработкой соляной ки лотой (101 по объему КЖ) и раствор маточника кристаллизации триптоф на В качестве наполнителя были выбраны свекловичный гам и дгтокснц рованная табачная мука. Варьируя соотношением КЖ и наполните ' (оптимально 1:3), краткостью упаривания КЯ наработаны опытно-промы ленные партии биостимуляторов с содержанием триптофана 1,6-2,8%. Пр дуоты по Республиканскому плану внедрены в специализированных хозяй твах для обогал^ния коршв.

Ь'аточник кристаллизации триптофана, содержащий в г/л: 4,89 триптофана, 1,46 лизина, 0,5 гистидина, 1,0 аргинина, 9,6 аспарат вой кислоты, 0,2 треонина, 2,4 глутаминовой кислоты, 2,1 глицина, С аланина, 0,7 валина, 0,3 метионина, 0,2 изолейцина, 0,5 лейцина, ' тирозина, 2,4 фенилаланина был использован для обогащения питатель; гранул с детоксицироБанной табачной мукой из стеблей растения. Пол; чгшше продукты переданы в хозяйства Республики. Технология исполь; ваякя в корырароизЕодстве двух отходов - триптофакового маточника ■¿■зйачньк стеблей, как показали испытания, перспективна длз разви-гэигдаводства в животноводства.

25

ВЫВОДЫ

1.Разработана технология комплексной переработки продуктов производства триптофана. На реальных объектах изучены с-акокомер-ности постадпйного проведения процесса, вклзиаидего солянокислый гидролиз культуралъаой жидкости, алэктрокэы'рачнуэ обработку биомассы и получение гранулированных кормовых биостимуляторов на основе маточников кристаллизации и культуралъвой ^идкостн триптофана.

2. Модкфтдкроваш методики анализа триптофана в' ск-эса ачаяс-кислот. Подобраны условия раздельного определения триптофана аген-трефораткчвеккм методом. Разработан метод анализа триптофана путем предколоночноЯ дерлватизвции О-фталэЕым диальдэгидом с последующим определением производного на обращенноразогом сорбенте высокоэффективного жидкостного хроматографа 1!илихро;л,г. Создан прстрачкно-аппараткый комплекс вдентнфакациа и количественной оСрабопса хро-матогра^ячесхах данных.

3. Разработан процесс гидролиза культуральпой гядносга (КЗ). Установлено, что гидролиз КЗ с добавлением 2-1 Е01 в отнесении 1:10 увеличивает содержание триптофана с 6,25 до 3,0 кг/м3.

4. Разработан элоктромчмбразный способ переработки осадков биомассы триптофана (продукт алегоотвала). Показано, что элехтро-даализ с ограничением рабочей камеры каттонооййняэп млмбранамд !Н-40 способствует увеличена?) холачостза коякшелот в конвертированной биомассе с 17,1 до 35.9-3 за счет деминерализации. Еняснэ-нс, что пр^ плотности тока ЮОА/м2 кальцпй аз осадков биомассы па 935 переходят з рпствсрачсо состояние л 803 з ваге Ca0i2 возвращается з основное производство. При этом происходит полный лизис iizatcs условно-патогенных !.асфооргппг».»оз п достигается сбеззара-павппав осадка биомасс.

5. определена параметры элктрсмембрааного переноса трштсфзна, лязига и глута-етювей гослсты аз модельшх ск-эсэ2. Заявлено влияние триптофана, сорелроваппого на мембранэ ?"С-40 з - статических условиях, па структуру а свойства ?.!9!«бреЕН.

Пахазано, что чртггефаз, сорбаровзлЕНЗ га разрушается

от контакта с :птслсродсм до ггадолроазводпях.

6. Псслэдоасл г'-чшсгослотзнЗ состав рпстасрзз ::рас-

таллизацяи триптофана, исходных и конвертированиях осадков биомассы, определено содержание триптофана в НЕ. Найдено, что ose могут являться хорошим сырьевым источником для получения кормовых биостимуляторов.

В соответствии с Республиканскими заданиями по планам внедрения наработаны кормовно продукт» на основе культуралыюй жидкости и маточных растворов кристаллизации триптофана на Бишкекско:.: заводе антибиотиков к внедрены в хозяйствах Республики.

ОСНОВНЫЕ РЕЗУЛЬТАТЫ ДЙССЕРТЩШ КЗЛ02ЕКЫ Б СЛВДУП^З РАБОТ ил

1.Стручяишна Т.Н., Котов В.Б., Прохоренко В.А., Богер A.M. Извлечение хлорида кальция из отходов микробиологического производства аминокислот. //Химия и технология редких, цветных металлов и солей: Тез.докл.Всосоюэ.конф.- Фрунзе.- 1536.- С.262.

2.Прохоренко В.А..Лнтовченко И.В. Определение триптофана методой ■ электрофореза.// Тр.молодых ученых - Фрунзе.-- IS3S.- С 174.

3.Стручалина Т.И.,Скляр В.И., Прохоренко В.А. и др. Научный отчет по теме "Разработать способ получения биокатализаторов к микробиологического синтеза ь~триптофана." БНТИЦ 02.86. 0082660.-19SG. С.26-27,С.65-76.

4.Стручалина Т.Н., Прохоренко Б.А.,Сан В.В. Устойчивость L-триптофана при различных значениях pH. Изменение к техпологичес-кому регламенту. Фонд,рукопись-Фрунзе - КОХ АН Кирг.ССР - 1933. Б.Прохоренко В.А.,Сан В.В. Влияние катионотовых мембран па устойчивость ь-триптофала.//Матер, ix Мекреспуб. науч. копф. молодых ученых.-Фрунзе: Илим, 1983. - С.155-156.

6.Стручалина Т.И.Прохоренко В.А., садабакасов. Определение трштофана в смеси аминокислот методом электрофореза.//Тез.VI Мездунар.симпоз. ВЗлХ протеинов, пептидов, полинуклэотидов ~1ТТ, г.Майнц.1936.

7.Козлова H.H., Стручалина Т.Н., Прохоренко В.А.,Куткипа О.П.,Сан В.В. Исследование взаимодействия триптофана с полимерными материалам:. //Тез. vi всесоюз.конф."Аминокислоты в'сельском хозяйстве, пищевой промышленности,медицине".-Ереван.1988.

б.Стручалина Т.Н.,Скляр В.И..Прохоренко В.А.ц др. Научный отчет по теме Тазработать кинетическую модель конверсии биомассы в топливо и другие ценные продукты." ВНТИЦ 029.1001522&-Ы.- 1ЭЭО.-С.134-1. ».

.Варвар Э.С.„ЧЕНГЕшева Р.И. .Стручалгна Т.Н., Прохоронко В.А., этов В.Б., Нефедов А.Г. Перспективы использования осадков биокасс зкробяологзческого производства аминокислот.// Продукты комплекс-па переработки отходов гшшоккслстного производства и пути их эалззации.-Бишкек: Илим, 1990.-С.97-105.

Э.Прохоренко В.А..Котов В.В..Стручалина Т.И.,Сан В.В. Сорбция -триптофана на катпоштовой мембране UK-4C з статических условиях ра различных рН.//Кзв.АН Кирг.ССР: Хим.-техн.н биод.науки.-1990.-3-С.35-40.

1 .Котов Е.В.,Емельянов Д.Я. .Харьянов E.H. .Прохоренко' В.А. Получена хлорида кальция электродиализом бисиассн. Деп.СШИТЭХШ. 14.04.SO Л305- Ш - 90.-11с.

2.Прохоренко В.А.,Стручаяина Т.И..Котов В.В., Жертиева Ю..М. Первое а'^окнелот через ионктовые мембраны при элек тродиализе их астворов.//Изв.АН Республики Кыргызстан: Хил.-техн. и биол.науки-S91 .-Й4- С.14-17.

3.Стручалнпа Т.И..Прохоренко В.А=,Котов В.В., Ээртиэва D.U. Осо-■энноста переноса некоторых шяшокнело? через понитовые иембраны рз электродяалнз8«//Тр.коЕф."Физино-х1СЯ1еские основы и практичес-:оэ пр1В.'9Е8Н29 пенных процессов". Воронез: ВГУ.1996.С.181-182

4.Прохоренко В.А..Стручал1ша T.Ii, Котов В.В. Механизм взазпю-;82ствия L-триптсфана с катпонитогоЗ мэ::брано2 L2C-40. // Там гэ.-• C.264-2G5

Б. Стручаллна Т.Н., Прохоренко В.А., Кофэдоз А.Г. Отхода зсроСиалогиче ciccro производства траптофана а путл их кяюльзовгная. -Прэпрнзт.- Esr:sx: Jtew.lSSS.- 24с.

Триптофанды микрсбдук синтезлоо окдурушун продуктыларьгнын коплскстуу иштстуу.

АННОТАЦИЯ

Триптофанды микробдун таасири менен синтездоа ендурушуну: калдилтары жана чала продуктлары изилденген. Алардыи комплекстуу иштету технологияеы иштелип чыккан. Технология культурадуу суюкту ас кычкылданьш гидролизденуу жана биомассаны электромембраналык иштетууку жолдорун камтыйтда кристаллданунун манызынын хана культуралду; суюнтуктун негизинде тоголоктощкон жем биостимуляторлорду алууг негизделген.

Триптофанды аныктоонун ынгайлуу жакшы жолдору иштелип чыккан L-триптофандын жана кээ бир амиккислотадарынын МК-40 катионитгу мсмбранасывда сорбцияланыши жана анын триптофандын туруктуулугун таасири текшерилген.

Prochorcnco Victor AJcxandrovich A complex trans formation of the tryptophane microbian synthesis manufactur products

ABSTRACT

The microbian synthesis tryptophane semiproducts and waste composition wa investigated. The technology of the complex utilization of the indicattd produci was worked out uncluding of the cultural liquid <CL) hydrolysis by means of IiC the electrical treatment of biomass through the. membranes and making out th granulated food biostimuiators on the basis of the mother liguid of cristailizatio and CL. Methods of the tryptophane determination were modified.

The L-tryplophane and some aminoacids absorbtion by the cationit membran (MK-40) audits influence on the tryptophane resissitance were studied.

Подписано к печати 30.12-96. Формат 60x84 '/16. Офсетная печать. Объем 1.0 пл. Тираж 100 экз. Заказ 171

Типография НАН Кыргызской Республики, 720001, Бишкек, ул.Пушкина, 144