Кинетические закономерности образования водорода и метана биокаталитическими системами тема автореферата и диссертации по химии, 02.00.15 ВАК РФ

ВВЕДЕНИЕ

ГЛАВА I. ГИДРОГЕНАШ - БИОЛОГИЧЕСКИЕ КАТАЛИЗАТОРЫ ОБРАЗОВАНИЯ МОЛЕКУЛЯРНОГО ВОДОРОДА.

1.1. Гидрогеназы.

1.1.1. Водород - уникальный субстрат гидрогеназ - идеальное газообразное топливо

1.1.2. Особенность строения активного центра гидрогеназ

1.2. Автокаталитический#характер реакции восстановления метилвиологена водородом в присутствии гидрогеназ

1.2.1. Кинетика реакции с профермент-ферментным взаимоде- 21 йствием. Бимолекулярный механизм активации

1.2.2. Автокаталитическое ускорение продуктом ферментати- 27 вной реакции

1.3. Влияние эффекторов на гидрогеназнуто активность

1.3.1. Кинетический метод оценки констант нестойкости комплекса фермента с ионами железа.

1.3.2. Ингибирование гидрогеназной активности комплексо-нами железа.

1.3.3. Активация гидрогеназ ионами никеля

1.4. Иммобилизация и свойства иммобилизованной гидрогеназы из Thiocapsa roseopersicina

1.4.1. Иммобилизация гидрогеназы на неорганическое стекло

1.4.2. Иммобилизация гидрогеназы на полиакрилонитрил

1.4.3. Иммобилизация гидрогеназы на сополимер терефтале-вого диальдегида и п-фенилендиамина.

ГЛАВА 2. ТЕРМОФИЛЬНАЯ ВОДОРОДООВРАЗУЮЩАЯ КУЛЬТУРА

2.1. Образование водорода микроорганизмами

2.2. Исследование метаболизма термофильной водородо-образугощей культуры.

2.3. Исследование влияния эффекторов на метаболизм водородообразующей культуры

2.3.1. Зависимость кинетических параметров метаболизма водородообразующей культуры от концентрации субстрата.

2.3.2. Влияние концентрации ионов водорода на метаболизм водородообразующей культуры.

2.3.3. Влияние продуктов метаболизма водородообразующей культуры на кинетические параметры её роста

2.4. Непрерывное культивирование водородообразующей 79 культуры

ГЛАВА 3. Кинетические закономерности образования метана метаногенной ассоциацией М. kuzneceovii

3.1. Биогенез метана.

3.1.1. Метаногенные бактерии

3.1.2. Проблемы практического использования и промышленного получения биометана

3.2. Кинетические закономерности образования метана клетками метаногенной ассоциации М. kuzneceovii

3.2.1. Нестационарная кинетика восстановления углекислого газа в метан клетками метаногенной ассоциации

3.2.2. Влияние органических кислот на образование метана клетками метаногенной ассоциации

- 4

3.2.3. Образование этилена метаногенной ассоциацией Methanobacillus kuzneceovii

3.3. Непрерывное культивирование термофильной метаногенной ассоциации Methanobacillus kuzneceovii . . . НО

3.4. Кинетические закономерности и механизм конверсии глюкозы в метан метаногенной ассоциацией

3.4.1. Конверсия глюкозы в метан в атмосфере аргона

3.4.2. Конверсия этилового спирта в метан

3.4.3. Конверсия уксусной кислоты в метан

3.4.4. Конверсия углекислоты в метан.

3.5. Математическое моделирование процесса конверсии глюкозы в метан метаногенной ассоциацией

ГЛАВА 4. ФЕРМЕНТАТИВНАЯ И РАДИАЦИОННАЯ ОБРАБОТКА СУБСТРАТА

БИОМАССЫ/ ДЛЯ ПОЛУЧЕНИЯ ГАЗООБРАЗНОГО ТОПЛИВА

4.1. Влияние целлюлазной обработки на конверсию биомассы в метан

4.2. Влияние ионизирующего облучения субстрата на кон

4.2.3. Биоконверсия других субстратов в метан

4.3. Влияние ионизирующего облучения на конверсию версию биомассы в метан

4.2.1. Биоконверсия биомассы азоллы в метан

4.2.2. Биоконверсия биомассы хлореллы в метан биомассы в водород

4.4. Образование метана природной метаногенной ассоциацией

4.4.1. Биоконверсия целлюлозосодержащего сырья в метан природной метаногенной ассоциацией

4.4.2. Биоконверсия сахарозы в метан природной метаногенной ассоциацией

ГЛАВА 5. БИОКОНВЕРСИЯ СОЛНЕЧНОЙ ЭНЕРГИИ В ГАЗООБРАЗНОЕ ТОПЛИВО /ВОДОРОД, МЕТАН/ НА ОСНОВЕ ДВУХ СОПРЯЖЕННЫХ ПО МЕТАБОЛИТАМ КУЛЬТУР МИКРООРГАНИЗМОВ

5.1. Основные теоретические аспекты биофотолиза воды.

5.1Л. Биофотолиз воды в модельных системах с переносчиками электронов.

5.1.2. Биофотолиз воды в системах микроорганизмов

5.2. Биофотолиз воды на основе системы двух микроорганизмов, сопряженных по метаболитам . . . J

5.2.1. Система биофотолиза воды: "Цианобактерия/синезеленая водоросль/ - термофильная водородо-образующая бактерия".

5.2.2. Система биофотолиза воды: "фотосинтезирующая водоросль - термофильная водородообразующая бактерия".

5.3. Преобразование солнечной энергии в метан, основанное на системе "Фотосинтез- метаногенез" 201 - "Биофотометан".

5.3.1. Система биофотометана: "Фотосинтезирующая водоросль - термофильная метаногенная ассоциация". сине

5.3.2. Система биофотометана: "Цианобактерия /зеленая водоросль/ - термофильная метаногенная ассоциация".

- б

Сттэ.

ГЛАВА б. МЕТОДЫ ИССЛЕДОВАНИЯ

6.1. Анализ образующихся газов

6.1.1. Измерение водорода.

6.1.2. Разделение водорода, метана и углекислого газа

6.1.3. Анализ метана и метана при низких концентрациях

6.1.4. Анализ летучих продуктов в жидкой фазе

6.2. Методы исследования ферментов - гидрогеназ

6.2.1. Определение активности гидрогеназ по восстанов-влению метилвиологена водородом

6.2.2. Определение активности гидрогеназ по выделению водорода.

6.2.3. Исследование влияния эффекторов на гидрогеназных активность

6.3. Методы исследования метанообразования

6.3.1. Выращивание термофильной метаногенной ассоциации М. kuzneceovii.

6.3.2. Получение бесклеточного экстракта термофильной метаногенной ассоциации М. kuzneceovii

6.3.3. Методы исследования кинетики метанообразования клетками метаногенной ассоциации М. kuzneceovii

6.3.4. Исследование этиленообразования клетками метаногенной ассоциации М. kuzneceovii.

6.3.5. Исследование кинетических закономерностей конверсии биомассы в метан метаногенной ассоциацией М. kuzneceovii.

6.3.6. Непрерывное культивирование термофильной метаногенной ассоциации М. kuzneceovii

6.4. Методы исследования водородообразующей культуры

6.4.1. Конверсия глюкозы водородообразующей культурой

6.4.2. Непрерывное культивирование водородообразующей культуры.

6.5. Метода иммобилизации.

6.5.1. Молекулярная сшивка с помощью полифункциональных реагентов 1,3,5-трибензальдегида и терефта-левого диальдегида

6.5.2. Ковалентное присоединение фермента к пористому неорганическому стеклу

6.5.3. Иммобилизация гидрогеназы на модифицированной матрице полиакрилонитрила

6.5.4. Модифицирование полиакрилонитриловых образцов

ВЫВОда.

Прогрессирующий дефицит ископаемых топлив ставит ряд проблем, связанных с поиском и технологическим освоением новых источников и новых способов преобразования энергии. Большие перспективы имеет солнечная энергия, одним из достоинств которой является экологическая чистота и практически бесконечные резервы. В настоящее время разрабатываются различные способы преобразования солнечной энергии. Одним из них является биологическая конверсия биомассы - продукта фотосинтеза - в газообразное топливо (водород, метан) (рис. I).

В последнее десятилетие значительное развитие получают биотехнологические методы получения газообразного и жидкого топлива. В первую очередь речь идет о системах конверсии целлюлоз ос одержащего сырья, о системах получения водорода биологическим путем, о создании замкнутых биосистем фоторазложения воды на водород и кислород (биофотолиз воды).

Разработка биотехнологических способов получения топлив связана с изучением кинетики и механизмов процессов, протекающих с участием биокаталитических систем.

Проблемамизучения кинетических закономерностей реакций получения водорода и метана биокаталитическими системами различного уровня организации посвящена данная диссертационная работа.

Цель исследования - создание кинетических основ конверсии энергии с использованием ферментов и микроорганизмов.

Кинетические исследования проводились с системами различной степени сложности. Первоначально изучались гидрогеназы -принципиально важные ферменты активации и использования водорода. Окислительно-восстановительные реакции с участием гидрore

СО, t со, hV

Г \t V н2о

ФОТОСИНТЕЗ

БИОМАССА

ФЕРМЕНТАТИВНЫЙ ГИДРОЛИЗ

РАСТВОРИМЫЕ УГЛЕВОДД

АЦЕТОГЕНЕЗ

СН3С00Н

СН,

МЕТАНОГЕНЕЗ

Рис л.

Схема преобразования солнечной энергии в газообразное топливо /водород, метан/. наз играют важную роль в ряде биохимических процессов, например, образование молекулярного водорода под действием световой энергии у ряда фотосинтезирующих микроорганизмов. Разработка систем преобразования солнечной энергии путем биоконверсии биомассы - продукта фотосинтеза в биогаз непрерывно связана с изучением биохимических особенностей гидрогеназ, кинетики и механизма их действия.

Следующим этапом работы был переход к новому, содержащему высокоактивную гидрогеназу, термофильному микроорганизму - во-дородообразущей бактерии, выделенной из гидротерм Камчатки, Исследование динамических и кинетических закономерностей механизма образования водорода является основным вопросом практического применения этой культуры для создания системы биофотолиза воды на водород и кислород.

Третьим этапом исследования был поиск закономерностей роста микробных популяций на примере метангенерирующей ассоциации, включающей водородобразующую бактерию.

Метаногены - анаэробные бактерии, которые в ассоциации с другими микроорганизмами конвертируют биомассу в метан. Изучение динамических и кинетических закономерностей механизма образования метана метаногенами и некоторых основных биотехнологических вопросов его получения являются фундаментальными проблемами химико-биотехнологического характера. Развитие последних необходимо для создания обоснованных представлений об интенсификации процесса и его практического применения с целью преобразования солнечной энергии в газообразное топливо.

Завершающий этап исследований был посвящен созданию систем получения газообразного топлива на основе культур микроорганизмов, сопряженных по метаболитам. Были разработаны системы конверсии солнечной энергии в водород и кислород и в метан.

Задачи исследования включали:

1. Изучение кинетики и механизма катализа гидрогеназами, разработка способа иммобилизации и частичной стабилизации ферментов.

2. Изучение кинетических закономерностей развития термофильной водородообразующей бактерии - нового биокатализатора для получения топлив. Изучение некоторых свойств культуры: соотношение продуктов метаболизма, скорость роста, скорость образования продуктов в зависимости от концентрации субстрата, от концентрации ионов водорода и от температуры. Изучение условий непрерывного культивирования и кинетических закономерностей образования этанола, уксусной кислоты, водорода и углекислого газа в зависимости от температуры, скорости разбавления и рН. Определение параметров, оптимальных для синтеза соответствующих продуктов и максимальной скорости газовыделения.

3. Изучение кинетических закономерностей метанообразова-ния симбиотрофной термофильной метаногенной ассоциацией, в том числе, влияния карбоновых кислот на выделение метана из внутриклеточных субстратов. Изучение биоконверсии глюкозы в метан метаногенной ассоциацией в качестве модельной системы для исследования анаэробной конверсии биомассы. Выявление наиболее важных химических реакций и построение кинетической схемы процесса метанообразования.

4. Исследование биотехнологических вопросов процесса метанообразования с целью его промышленного применения; и методов обработки биомассы фотосинтетиков с целью интенсификации процесса получения газообразного топлива.

5. Исследование возможности создания биологического цикла преобразования солнечной энергии в энергию биогаза на основе комбинированной системы "фотосинтез - метаногенез" и "биофотолиз воды".

- 229 -ВЫВОДЫ

1. Впервые был обнаружен автокаталитический характер реакции восстановления метилвиологена молекулярным водородом в присутствии гидрогеназ с участием продукта реакции. Разработан метод определения концентрации активных центров ферментов из т. roseopersicina . Исследовано ингибирование гидрогеназной активности кошлексирущими ионами железа. Исследована активация гидрогеназной активности ионами никеля. На основе иммобилизации фермента на сополимере получена стабильная гидрогеназа.

2. Проведено исследование метаболизма термофильной водородообразующей культуры, определены максимальные скорости роста культуры, скорости образования продуктов. Исследована зависимость этих скоростей от концентрации субстрата и от концентрации ионов водорода. Впервые осуществлено непрерывное культивирование культуры по принципу хемостата с установлением оптимальных условий для максимального выделения водорода.

3. Детально исследована конверсия глюкозы в метан метаногенной ассоциацией, впервые разработана математическая модель данного процесса, состоящая из системы нелинейных дифференциальных уравнений, которые достаточно полно и точно описывают механизм процесса конверсии глюкозы в метан.

4. Впервые обнаружено образование этилена анаэробными организмами метаногенерирующей культурой из Hg и Высказано предположение, что метан и этилен - продукты биосинтеза различных энзиматических систем метангенерирующей культуры. Впервые исследовано непрерывное культивирование термофиль-. ной метаногенной ассоциации Methanobacillus kuzneceovii Непрерывное культивирование позволило увеличить скорости генерации метана в 4-9 раз по сравнению с периодическим.

5. Исследована конверсия биомассы микроводорослей, цианобаяте-рий и азоллы в газообразное топливо (водород и метан). Показана возможность их использования в качестве субстрата для получения газообразного топлива. Предварительная обработка биомассы ионизирующим излучением увеличила выход биогаза в сотни раз.

6. Создана экспериментальная установка по биоконверсии солнечной энергии в водород и метан, которая основана на метаболическом сопряжении двух микроорганизмов.

1. Березин И. В., Варфоломеев С.Д., Солнечно - водороднаяэнергетика. Проблемы и перспективы. В сборнике статей: " Преобразование солнечной энергии ". Под общей редакцией Н.Н. Семенова. Академия наук СССР. Черноголовка, 1981, с. 96 101.

2. Березин И.В., Варфоломеев С.Д. Преобразование солнечнойэнергии путем фотосинтетического получения молекулярного водорода.

3. Гелиотехника, 1976, Т.З, с. 60 73.

4. Kaugh Т.Н. Hydrogen. Synthetic fuel of the future.

5. Science, 1972, v.178, p.849-852.4 . Варфоломеев С.Д., Биотехнология преобразования солнечнойэнергии современное состояние, проблемы и перспективы.-Итоги науки и техники: Биотехнология. ВИНИТИ, Москва, 1983, T.I, с.6-62.

6. Erbes D.L., Burris Н.Н. On the iron sulfur cluster in hydrogenase from Clostridium pasteurianum W 5.- Proc. Nat. Acad. Sci. USA, 1975, v.72, N 12, p.4795-4799.

7. Schneider K., Cammack R. , Sehlegel H.G., Hall D.O. The ironsulfur centres of soluble hydrogenase from Alcaligenes eutro-phus. Biochim. Biophys. Acta, 1979, v.578, p.445-461.

8. Adams M.W.W., Mortenscm L.E. The physical and catalytic properties of hydrogenase II of Clostridium pasteurianum. A comparison with hydrogenase I.- J. Biol. Chem. 1984, v.259, U 11, p.7045-7055.

9. Partridge C.D.P., Yates M.G. Effect of chelating agents onhydrogenase in Azotobacter chroococcum.- Biochem. J. 1982, v.204, p. 339-344.

10. Klibanov A.M., Kaplan И.О., Kamen M.D. Chelating agents protect hydrogenase against oxygen inactiyation. - Biochim. Biophys. Acta, 1979, v.547, p.411-416.

11. Fischer H.F., Krasna A.I., Rittenberg D. Interactioii ofhydrogenase with oxygen.- J. Biol. Ghem., 1954, v.209, N 2, p. 569-578.

12. Henry L. E.A., Adams M.W.W., Bao K.K., Hall 0. The effectof oxygen species on the enzymatic activity of hydrogenase.-PEBS Letters, 1980, v.122, S 2, p.211-214.

13. Яковлев В.А., Мицова И.З. Действие ингибиторов на гидрогеназу Azotobacter Yinelandii.- Биохимия, 1970, Т. 35, Р 4, с.675-680.

14. Чан Динь Тоай, Варфоломеев С.Д., Гоготов И.Н., Березин И.В.

15. Кинетические закономерности инактивации бактериальных гидрогеназ.- Молекулярная биология, 1976, Т.10, № 2, с.451-459.

16. Березин Й.В., Варфоломеев С.Д., Гоготов И.Н., Чан Динь Тоай.

17. Исследование стабильности гидрогеназ из фототрофныхбактерий roseopersioina.

18. ДАН COOP, 1975, сер. биол. Т.220, с.237-239.

19. Drake Н. Demonstration of Hydrogenase in extracts of thehomoaoetate fermenting bacterium Clostridium thermoaceti-cum.- J. Bacterid. 1982, v. 150, XT 2, p.702-709.

20. Le Gall, Der Vartanian D.V., Spilkej? E., Lee J.P., Peck H.

21. D.Jr. Evidence for the involvement of non heme iron in active site of hydrogenase D.vulgaris. - Biochim. Biophys. Acta, 1971, v.234, N 3, p.525-530.- 233

22. Grande H.J., Dunham W.R., Averill В., Van Duck C., Sands R.

23. H. Electron paramagnetic resonance and other properties of hydrogenases isolated from Desulfovibrio vulgaris (strain Hildenborough) and Megasphaera elsdenii.- Бит. J. Biochem., 1983, v.136, N 1, p.201-207.

24. Schneider K., Cammack R., Schlegel G. Content and localization of PMH, Pe S cluster and nickel in the NAD - Linked hydrogenase of Nocardia opaca 1 b.- Eur. J. Biochem.,1984, v.142, N 1, p.75-84.

25. Adam M.W.W., Mortenson L.E., Chen J.S. Hydrogenase.- Biochim. Biophys. Acta, 1981, v.594, p.105-176.

26. Hall D.O., Rao K.K., Cammack R. The iron - sulfur proteins:structure function and evolution of ubiquitors group of proteins.- Sci. progr. 1975, v.62, N 246, p.285-287.

27. Carter C.W. Jr., Kraut J., Freer S.T., Alden R.A., Sieker

28. C., Adman E., Jensen L.H. A compasison cd^Pe^S^ clusters in high-potential iron protein and in ferredoxin.- Proc. Nat. Acad. USA, 1972, v.69, N 12, p.3526-3529.

29. Orme-Johnson W.H. Iron-sulfur proteins: structure and function.- Annual Rev. of Biochem. 1973, v.42, p.159-204.

30. Que J.R.L., Holm R.H., Mortenson L.E. Extrusion of PegSgЩand -Pe^S^ cores from the active sites of ferredoxin protein.- J. Am. Chem. Soc. 1975 / 97:2/ ;Jan. 22 (1975), p. 463-464.

31. Orme-Johnson N., Mims W.B., Orme-Johnson W.H., Bartsch L.G.,

32. Cusanovich M.A., Peisach J. Oxidation state dependence of proton exchange near the iron-sulfur centers in ferredoxins and high-potential iron-sulfur proteins.- Biochim, Biophys. Acta, 1983, v.748, N 1, p.68-72.- 234

33. Зорин Н.А., Гоготов И.Н. Гидрогеназная активность

34. Thiocapsa roseopersicina по реакции обмена D2 ~ Н2°*~ Биохимия, 1975, Т.40, вьш.1, с.192-195.

35. Bagyinka С., Kovacs К.Ь., Rak Е. Localisation of hydrogezxase in Thiocapsa roseopersicina photosynthetic membrane.-Biochem. J. 1982, v.202, p.255-258.

36. Karu.be I., Urano N., Yamada Т., Hirochika H., Sakaguchi K.

37. Cloning and expression of the hydrogenase gene from Clostridium bityricum in Escherichia coli.- FEBS Lett. 1983, v.158, H 1, p.119-122.

38. Dadawal K.R., Grover R., Tauro P. Uptake hydrogenase in

39. Rhizobium and module leghemoglobin in cow pea miscellany hoses.- Arch. Microbiol. 1982, v.133, N 4, p.303-306.

40. Colbeau A., Vignais P.M. The membrane - bound hydrogenaseof Rhodopseudomonas capsulata stability and catalytic properties.» Biochim. Biophys. Acta, 1981, v.662, N 1, p.271--284»

41. Adam M.W.W., Mortenson L.E. The purification of hydrogenase1. (uptake hydrogenase) from the anaerobic Fg fixing bacterium Clostridium pasteurianum.- Biochim. Biophys. Acta: Bioenergetics. 1984, v.766, (B 68), U 1, p.51-61.

42. Jacobson F.S., Daniels L., Fox J.A., Walsh С.Ф., Orme-Johnson

43. W.H. Purification and properties of an 8-Hydroxy-5-deazaf-lavin-reducing hydrogenase from Methanobacterium thermo-autotrophicum.- J. Biol. Chem. 1982, v.257, П 7, p.3385-3387.

44. Albracht S.P.J., Kalkman M.b., Slater E.C. Magnetic internaction of nickel (III) and the iron-sulphur cluster.- Bio-chim. Biophys. Acta, 1983, v.724, p.309-316.

45. Fredricks W.W., Stadtman E.R. The role of ferredoxin inthe hydrogenase system from Clostridium kluyveri.- J.Biol'. Chem. 1965, v.240, N 10, p.4065-4071.

46. Hall D.O., Cammack R., Rao K.K. The iron sulfur protein:

47. Evolution of a ubiquitons protein from model systems to higher organisms.- Origins of Life, 1974, 5» p.363-386.

48. Okura X., Nakamura K.I., Hakamura S. Studies on the ironsulfur cluster in hydrogenase from Desulfovibrio vulgaris.-J. Mol. Cat. 1979, v.6, H 5, p.311-319.

49. Okura I., Nakamura S., Kobayashi M. Bovine serum albumincoordinated iron sulfur cluster as a hydrogenase model.-Bull. Chem. Soc. Jpn. 1981, v.54, p.3794-3798.

50. Gillum W.O., Mortenson L.E., Chen J.-S., Holm R.H. Quantitative extrusions of the Fe^S^* cores of the active sites of ferredoxins and hydrogenase of Clostridium pasteurianum.-J. Am. Chem. Soc. 1977, v.99, p.584-595.

51. Chen J.S., Mortenson L.E., Palmer G. Iron - sulfur clusterhydrogenase of CI. pasteurianum.- In. ''Iron copper proteins", (Yasunobu K.T.) Plenum press, Hew York, 1977, p. 68-82.

52. Strekas Т., Krasna A.I. Nature of the iron - sulfur coreand stability of chromatium hydrogenase.- In "Hydrogenases: The catalytic activity, structure and function" (Schlegel H. G. and Schneider K., eds), E.Goltze E.G., (rottingen. 1978, p.141-150.

53. Mortenson L.E., Nakos G. Bacterial ferredoxins and / oriron sulfur protein as electron carriers.- In: Iron - sulfur protein" (Lovenberg W. ed.) Academic Press Inc., Hew York. 1973, p.37-64.

54. Hatchikian E.C., Bruschi M., Forget N., Scandellari M.

55. Electron transport components from methanogenic bacteria: The ferredoxin from Methanosarcina barkeri (strain Fusaro).-Biochem. Biophys. Res. Commun. 1932, v.109, N 4» p.1316--1323.

56. Friedrich C.G., Friedrich B. Regulation of hydrogenase formation is temperature sensitive and plasmid coded in Alca-ligenes eutrophus.- J. Bacteriol. 1983, v.153* N 1,p.176--181.

57. Lalla - Maharajh W.V,, Hall D.O., Cammaak R., Rao K.K*,

58. Gall J. Purification and properties of the membrane -bound hydrogenase from Desulfovibrio desulfuri^cans.-Bio-chem. J. 1983, v.209, N 2, p.445-454.

59. Tait R. Hydrogenase genetics.- Enzyme Microb. Technol. 1984» v.4, N 1, p.66-72.

60. Krasna A.I., Rittenberg D. The mechanism of action of enzyme hydrogenase. J.Am. Chem.,Soc. 1954. v.76» N 11, p.3015-3020.

61. Van der Werf A.N.» Yates M.G. Hydrogenase from nitrogenfixing. Azotobacter chroococeum.- In: "Hydrogenases: Their catalytic activity, structure and function" (Sehlegel H.G. and Schneider K., eds) E.Goltze K.G. Gottingen, 1978,p.307--326.

62. Diekert G., Klee В., Thauer R.K. Nickel, a component offactor I^o *rom Methanobacterium thermoautotrophicum.-Arch. Microbiol. 1980, v.124, p.103-106.

63. Tan S.L., Pox J.A., Kojima N. Watsh C.T., Orme-Johnson W.H.

64. Nickel coordination in diazaflavin an viologen reducing hydrogenase s from Methanobacterium thermoautotrophicum: investigation by electron spin echo spectroscopy.- J. Amer. Chem. Soc. 1984, v.106, No.10, p. 3064-3066.

65. Diekert G., Weber В., Thauer R.K. Nickel dependence of factor P430 con'ten"fc in Methanobacterium thermoautotrophicum.-Arch. Microbiol. 1980, v.127, p.273-278.

66. Graf E.-G., Thauer R.K. Hydrogenase from Methanobacteriumthermoautotrophicum, a nickel-containing enzyme.- PEBS Lett, 1981, v.136, N 5, p.165-169.

67. Albracht S.P.J., Graf E.-G., Thauer R.K. The EPR propertiesof nickel in hydrogenase from Methanobacterium thermoautotrophicum.- PEBS Lett. 1982, v.140, p.311-313.

68. Whitman W.B., Wolfe R.S. Presence of nickel in factor P^qfrom Methanobacterium bryantii. Biochem. Biophys. Res. Coimmm. 1980, v.92, p. 1196-1201.

69. Hausinger R.P., Orme - Johnson W.H., Walsh C. Nickel tetrapyrrole cofactor comparison of the forms bound tomethyl coenzyme M reductase and protein free cells methanobacterium thermoautotrophicum ДН+. Biochem. 1984, v.23, p.801-804.

70. Diekert G., Jaenchen R., Thauer R.K. Biosynthetic evidencefor a nickel tetrapyrole structure of factor P^q from Methanobacterium thermoautotrophicum.- PEBS Lett. 1980, v.119, N 1, p.118-120.

71. Schonheit P., Moll J., Thauer R.K. Nickel, Cobalt and molebdenum requirement for growth of Methanobacterium thermoautotrophicum.- Arch. Microbiol. 1979, v. 123, р.Ю5-Ю7.

72. Priedrich В., Heine E., Pinck A., Priectrich G.G. Nickelrequirement for active hydrogenase formation in Alcaligenes eutrophus.- J. Bacteriol. 1981, v.145, N 3, p.1144-1149.

73. Stults L.W., O'Hara E.B., Maier R.J. Nickel is a componentof hydrogenase in Rhizobium jjaporicum.- J. Bacteriol. 1984, v.159, N 1, p.153-158.- 239

74. Priedrich C.G., Schneider K., Priedrich B. Nickel in thecatalytically activity hydrogenase of Alcaligenes eutrophus.-J. Bacterid. 1982, v. 152, N 1, p. 42-48.

75. Kruger H.-J., Huynh H.B., Ljungdahl P.O., Xavier A.V.,.

76. Der Vartanian D.V., Moura I., Peck H.D., Teiseixa M., Moura J.J.G., Le Gall J. Evidence for nickel and a three iron cente: in the hydrogenase of Desulfovibrio desulfuricans.- J. Biol. Chem. 1982, v.257, N 24, p.14620-14623.

77. Czechowski M.H., He S.H., Nacro M., Der Vartanian, Peck H.D.,

78. Gall J. A cytoplasmic nickel iron hydrogenase with high specific activity from Desulfovibrio multispirans sp.n., a new species of sulfate reducing bacterium.- Biochem. Biophys. Res. Commun. 1984, v.125, N 3, p.1025-1032.

79. Unden G., В о cher R., Knecht J., Kroger A. Hydrogenase from

80. Vibrio succlnogenes, a nickel protein.- PEBS Lett. 1982, v.145, N 2, p.230-234.

81. Colbeau A., Vignais P.M. The membrane-bound hydrogenase of

82. Rhodopseudomonas capsulata is inducible and contains nickel Biochim. Biophys. Acta, 1983, v.748, N 1, p.128-138.

83. Takakura S., Wall J.D. Enhancement of hydrogenase activityin Rhodopseudomonas capsulata by nickel.- PEMS Microbiol. Lett. 1981, v.12, p.359-363.69 -Лихтенштейн Г.И. Многоядерные окислительно-восстановительные металлоферменты. " Наука ", М. 1979, 323 с.

84. Колдин Е.Ф. Быстрые реакции в растворе. " Мир ", М. 1966,309 с.

85. Карапетьянц М.Х., Карапетьянц M.JI. Основные термодинамические константы неорганических и органических веществ. " Химия М. 1968, 470 с.

86. Варфоломеев С.Д., Бачурин С.О., Чан Динь Тоай. Автокаталитические ферментативные реакции,- Молекулярная биология, 1977, Т.II, W 2, с.423-431.

87. Чан Динь Тоай. Кинетические закономерности катализабактериальными гидрогеназами. Канд. диссертация. Москва, МГУ, 1976, 178 с.

88. Кондратьева Е.Н., Гоготов И.Н. Молекулярный водород вметаболизме микроорганизмов. " Наука М. 1981, 342 с.

89. Зацепин С.С. Условия образования молекулярного водорода

90. Citrobacter freundii.- Микробиология, 1980, Т.49, № 4, с.489-492.

91. Глав. ред. Никольский Б.П. Справочник. Химия Ш. " Химия1. М Л. 1965, с.139.

92. Березин И.В., Клесов А.А. Практический курс химической иферментативной кинетики. " МГУ ", М. 1976, 320 с.

93. Чан Динь тоай, Медиан Д.Я., Варфоломеев С.Д.

94. Иммобилизация гидрогенз.- Вестник Моск. ун-та. деп. ВИНИТИ, № 3404 от 24.05.84.

95. Бачурин С.О., Варфоломеев С.Д., Тысячная И.В., Давыдов Б.

96. Э., Мавренкова Г.В., Березин И.В. Ферменты в органических полупроводниках. Гидрогеназа, иммобилизованная на термо-обработанных полиакрилонитрилах.- ДАН СССР, 1980, Т.253, № 2, с,370-372.

97. Богдановская В.А., Варфоломеев С.Д., Тарасевич М.Р., Ярополов А.И. Биоэлектрокатализ. Активация водородной реакции иммобилизов. гидрогеназой.- Электрохимия,1980,Т16,763-767.

98. Ярополов А.И., Карякин А.А., Гоготов И.Н., Зорин Н.А.,

99. Варфоломеев С.Д., Березин И.В. Биоэлектрокатализ. Механизм окисления молекулярного водорода на электроде с иммоб.гидрогеназой,- ДАН СССР, 1984, Т.274, W 6, с.1434-1437.

100. Tran Dinh Toai. Immobilization of hydrogenase of Thiocapsaroseopersicina.- Tap San Hoa Hoc. 1979, v.17i H 4, p.25-28.

101. Klibanov A.M., Huber J. Application of immobilized hydrogenase for detritiation of water.- Biotechnol. Bioeng. 1981, v.23, p.1537-1551.

102. Hatchikian E.C., Monsan P. Highly active immobilized hydrogenase from Desulfovibrio gigas.- Biochem. Biophys. Res. Commun. 1980, v.92, N 4, р.Ю91-Ю9б.

103. Lappi D.A., Stolzenbach P.E., Kaplan И.О., Kamen M.D.1.mobilization of hydrogenase on glass beads.- Biochem. Biophys. Res. Commun. 1976, v.69, N 4, p.878-884.

104. Gaffren H., Rubin J. Fermentative and photochemical production of hydrogen ia alagae.- J. Gen. Physiol. 1942, V.26, p.219-240.

105. Nell G., Nicholas D.J.D., Bockris J. 0*M., Mc Cann J.F.

106. The photosynthetic production of hydrogen. Int.J. Hydrogen Energy. 1976, v.1, p.45-48.

107. Asada Y., Tonomura K., Nakayama 0. Hydrogen Evolution Ъуan Isolated strain of Anabaena.- J. Ferment Technol. 1979» v.57, N 4, p.280-286.

108. Zhang X.» Tabita R., Van Baalen C. Nickel control of hydrogen production and uptake in Anabaena spp. strains CA and 1F. J. Gen. Microbiol. 1984, v.130, N 7, p.1815-1818.

109. Benemann J.R., Weare N.M. Hydrogen evolution by nitrogenfixing Anabaena Cylindrica cultures.- Science, 1974, v.184, p.174-175.

110. Zurrer H., Bachofen R. Hydrogen production by the photosynthetic bacterium Rhodospirillum rubrum.- Appl. Environ. Microbiol. 1979, v.37, N 5, p.789-793

111. Matheron R., Baulaigue R. Photoproduction d« hydrogene sursoufre et sulfure par des chromaticeae.- Arch. Microbiol. 1983, v.135, N 3, p.211-214.

112. Hillmer P., Gest H. H2 metabolism in the photosyntheticbacterium Rhodopseudomonas capsulata: H2 production by growing cultures.- J. Bacterid. 1977, v.123» p.724-731.

113. Hillmer P., Gest H. Hydrogen metabolism in the photosynthetic bacterium Rhodopseudomonas capsulata: Production and utilization of H2 by resting cells.- J. Bacterid. 1977, v.129, p.732-739.

114. Gest H., Kamen M.D. Photoproduction of molecular hydrogen

115. Rhodospirillum rubrum.- Science. 1949, v.108, 558-559.

116. Daday A.', Platz R.A., Smith G.D. Anaerobic and aerobichydrogen gas formation by the blue green alagae Anabaena cylindrica. - Appl. Environ. Microbiol. 1977» v.34,Л 5, p.487-493.

117. Ormed J.G., Ormed K.S., Gest H. Light dependent utilizationof organic compounds and photoproduction of molecular hydrogen by photosynthetic bacteria; relationship with nitrogen metabolism.- Arch. Biochem. Biophys. 1961, v.94, p.449-453»

118. Pavetic M., Tausch H., Stehlik G., Roehr M. Influence ofruthenium, rhodium and vanadium ions on phot oproduct ion of hydrogen by Chlorella fusca.- Photochem. Photobiol. 1984, v.40, U 1, p.15-21.

119. Spiller H., Bookjans G., Shanmugam K.I. Regulation ofhydrogenase activity in vegetative cells of Anabaena variabilis.- J. Bacterid. 1983, v. 155, H 1, p. 129-137.

120. Daday A., Smith G.I. The effects of nickel on the hydrogenon tb.e hydrogen metabolism of the cyanobacterium Anabaena cylindrica.- FEMS Microbiology Letters. 1950, v.20, К 1, p.327-330.

121. Bothe H. Hydrogen production by algae.- Experientia, 1982,v.38, И 1, p.59-64.- 244

122. Zurrer H. Hydrogen production by photosynthetic bacteria.

123. Experientia, 1982, v.38, N 1, p.64-66.

124. Laczko'. I., Barabas K. Hydrogen evolution by phot obi eached

125. Anabaena cylindrica.- Planta, 1981, v.153, No.4, p.312-316.

126. Will son J.C., Madern D., Vignais P.П. Increased photoproduction of hydrogen by non-autotrophic mutants of Ehodopseudo-monas capsulata.- Biochem. J. 1984, v.219, N 2, p.593-600.

127. Roessler P.G., lien S. Purification of hydrogenase from

128. Chlamydomonas reiahardtii.- Plant physiol. 1984, v.75, N 3, p.705-709.

129. Gorrell Т.Е., Uffen R.L. Light-dependent and light-independent production of hydrogen gas by photosynthesizing Rhodospirilium rubrum mutant C. Photochem. and Photobiol. 1978, v.27, N 3, p.351-358.

130. Beneman J. Hydrogen and methane production through microbial photosynthesis.- Living Syst. Energy Convert. Amsterdam e.a, 1977, p.285-297.

131. Lambert G.R., Smith G.D. Hydrogen formation by marinablue green algae.- PEBS Letters, 1979, v.83, p.159-162.

132. Jeffries T.W., Timourian H., Warb R.L. Hydrogen productionby Anabaena cylindrica: effects of varing amonium and ferric ions, pH, and light. App. and Envirol. Microbiol. 1978, v.35, N 4, p.704-710.

133. Hilhorst R., Laane C., Veeger C. Photosensitized productionof hydrogen by hydrogenase in reversel micelles.- Proc. Nat. Acad. Sci. USA, Phys. Sci. 1982, v.79, N 2, p.3927-3930.

134. Гоготов И.Н., Косяк А.В., Крупенко А.Н. Образованиеводорода цианобактериями Anabaena variabilisв присутствии света.- Микробиол. 1976, Т.45, с.941-945.- 245

135. Гоготов И.Н., Миткина Т.В., Глинский В.П.

136. Влияние аммония на выделение водорода и азотфиксацию Bhodopseudomonas palustris.- Микробиол. 1974,Т43,586-591.

137. Ощепков В.П., Красновский А.А. Исследование выделенияводорода приосвещении водорослей.- Физиология растений, 1972, Т.19, Р 5, с.1090-1097.

138. Ощепков В.П., Красновский А.А. Фотообразование молекулярного водорода зелеными водорослями.- Изв. АН СССР, сер. биол. 1976, № I, с.87-100.

139. Ощепков В.П., Никитина К.А., Гусев М.В., Красновский А.

140. Zajic J.E., Margaritis A., Brossean J.D. The productionof hydrogen gas by Citrobacter intermedius.- Am.Inst.Chem. Eng.Symp. Ser. 1978, v.74, H 181, p.98-104.

141. Варфоломеев С.Д. Биоконверсия энергии в системах микроорганизмов.- ИТОГИ науки и техники: Микробиология, биосинтез ферментов микроорганизмами. М. 1978, Т.9,168-205.

142. Гоготов И.Н., Косяк А.В. Метаболизм водорода у

143. Anabaena variabilis в темноте,- Микробиология, 1976, Т. 45, с.586-591.- 246

144. Персанов В.Ы., Гоготов И.Н. Выделение молекулярноговодорода клетками хлореллы в темноте,- Физиология растений, 1978, Т.25, с.1139-1143.

145. Кондратьева Е.Н., Гоготов И.Н. Микроорганизмы - продуценты водорода.- Изв. АН СССР, сер.биол. 1976, № I, с.69-86.

146. Кондратьева Е.Н. Биоконверсия солнечной энергии приучастии фототрофных микроорганизмов.- Приклад, биохимия и микробиология, 1978, Т.14, Р 6, с.805-817.

147. Гоготов И.Н., Зорин Н.А. Метаболизма водорода игидрогеназная активность Rhodospirilium rubrunu-Микробиология, 1972, Т.41, № 6, с.947-952.

148. Voelskow Н., Schon G. Hg production of Rhodospirillumrubrum during adaptation to anaerobic dark conditions.-Arch. Microbiol. 1980, v.125, p.245.

149. Ben - Amotz A., Erbes D.C., Piedere - Henderson M.A. etal. Hg metabolism in phototrophic organisms. 1. Dark H2 evolution and uptake by algae and mosees.- Plant. Physiol., 1975, v.56, p.72-77.

150. Miura Y., Yagi K., Shoga M., Miyamoto K. Hydrogen production by a green alga, Chlamydomonas reinhardtii, in a alternating light / dark cycle.- Biotechnol. and Bioeng. 1982, v.24, N 7, p.1555-1563.

151. Bamberger E.S., King D., Erbes D.L., Gibls M. H2 u C02evolution by anaerobically adapted Chlamydomonas reinhardti F 60.- plant. Physiol. 1982, v.69, N 6, p.1268-1273.

152. Miura Y., Yagi K., Nakano Y., Miyamoto K. Requirement ofoxygen for dark hydrogen evolution by green alga Chlamydo- 247 monas reinhardtii. J. Ferment. Technol. 1981, v.59» N 6, p.441-446.

153. Salminen S.O., Nelson L.M. Role of uptake hydrogenasein providing reductant for nitrogenase in Rhizobium leguminosarum bacteroids. Biochim. Biophys. Acta. Bio-energetics, 19S4, 764, B.66, N 2, p.132-137.

154. Zhang X., Haskell J.B., Tabita F.R., Van Baalen C.

155. Aerobic hydrogen production by the heterocystous cyano-bacteria Anabaena spp. strains CA and 1F. J. Bacteriol. 1983, v.156, N 3, p.1118-1122.

156. Zajic J.E., Kosaric N., Brossean J.D. Microbial production of hydrogen. Adv. Biochem.: Eng. 1978, v.9, N 1» p.57-Ю9.

157. Macler B.A., Pelroy R.A., Bassham J.A. Hydrogen formation in nearly stoichiometric amounts from glucose by a Rhodopseudomonas sphaeroides muntant. J. Bacteriol. 1979, v.138, N 2, p.446-452.

158. Lamed R., Zeikus J.G. Glucose fermentation patway of

159. Thermoanaerobium brockii.- J. Bacteriol. 1980, v.141, p.1251-1257.

160. Thauer R.K., Jungerman K., Decker K. Energy conservation . in chemotrophic anaerobic bacteria.- Bacteriol. Rev.1981, v.3, p.101-103.

161. Thauer R.K., Jungerman, Decker K. Energy conservation inchemotrophic anaerobic bacteria.- Bacteriol. Rev. 1981, v.41, p.100-180.

162. Schink В., Zeikus J.G. Clostridium thermo^sulfurogenessp. nov. a new thermophile that produces elemental sulfur from thiosulfate.- J. Gen. Microbiol. 1983, v.129, p.1149--1158.

163. Wiegel J., Ljungdahl L.G. Thermoanaerobacter ethanolicus ,gen. nov. sp. nov. a new extreme thermophilic anaerobic bacterium. Arch. Microbiol. 1981, v.128, p.343-350.

164. Hyun H.H., Zeikus J.G., Longin R., Millet J., Ryter A.

165. Ultrastructure and extreme heat resistance of spores from thermophilic Clostridium species. J. Bacterid. 1983, v.156, N 3, p.1332-1337.

166. Herrero A.A., Gomez R.F., Roberts M.F. Ethanol inducedchanges in the membrane lipid composition of Clostridium thermocellum.- Biochim. Biophys. Acta, 1982, v.693, p.195-204.

167. Zeikus J.G., Hegge P.W., Anderson M.A. Thermoanaerobiumbrockii gen. nov. spec. nov. A new caldoactive anaerobic bacterium.- Arch. Microbiol., 1979, v.122, p.41-47.

168. Wiegel J., Lungdahl L.G., Rawson J.R. Isolation fromsoil and properties of the extreme thermophile Clostridium thermohydrosulfuricum.- J. Bacteriol., 1979, v.139, p.800-810.

169. Zertuche L., Zall R.R. A study of produring ethanolfrom cellulose using Clostridium thermocellum.- Biotech-nol. Bioeng. 1982, v.24, p. 57-68.

170. Lamed R., Zeikus J.G. Ethanol production by thermophilic bacteria: relationship between fermentation product yields and catabolic enzyme activities in Clostridium thermocellum and Thermoanaerobium brockii.- J. Bac-teriol. 1980, v.144, p.569-578.

171. Березин В.Й., Дольников Г.А., Захарова E.B. Термофильнаяанаэробная бактерия, образующая молекулярный водород.

172. В сб. тезисов, докладов, стендовых сообщений на Всесоюзной конференции: "Термофильные микроорганизмы в природе и практике народного хозяйства". М, 1983, с.84.

173. Перт С.Дж. Основы культивирования микроорганизмов иклеток. "Мир", М, 1978, 332 с.

174. Bryant М.Р. Microbial methane production - Theoreticalaspects. J. Anim. Sci. 1979, v.48, N 1, p.193-201.

175. Archer D.B. Hydrogen - using bacteria in a methanogenicacetate enrichment culture.- J. Appl. Bacterid. 1984, v.56, N 1, p.125-129.- 250

176. Крепис И.В. Возможности и перспективы получения энергии с помощью метанового брожения.- Изв. АН СССР Сер. биол. 1979, № I, с.103-112.

177. Zeikus J.G., Henning D.L. Methanobacterium arbophilicum sp. nov., an obligate anaerobe isolated from wet-wood of living trees. Antonie van Leenwenhoek.- J. Microbiol. Serol. 1975, v.41, p.543-552.

178. Zeikus J.G. The biology of methanogenic bacteria.

179. Bacterid. Rev. 1977, v.41, p.514-541.

180. Zehnder A.J.B. Ecology of methane formation.- In:

181. Water pollution microbiology." (R.Mitchell ed.) John Wilev and Sons. Inc. New York, 1978, v.2, p.349-376.

182. Pox G.E., Magrum L.J., Balch W.E., Wolfe R.S., Woese

183. C.R. Classification of methanogenic bacteria by 16S ribosomal RNA characterization.- Proc. Natl. Acad. Sci USA, 1977, v.74, p.4537-4541.

184. Seely R.J., Fahrney D.E. Levels of cyclic - 2,3 - diphosphoglycerate in Methanobacterium thermoautotrophi-cum during phosphate limitation.- J. Bacteriol. 1984, v.160, N 1, p.50-54.

185. Seely R.J., Fahraey D.E. The cyclic - 2,3 - diphosphoglycerate from Methanobacterium thermoautotrophicum is the D enantiomer.- Curr. Microbiol. 1984, v.10, p.85-88.

186. Tornabene T.G., Langworthy T.A. Diphytanyl and dibiphytal glycerol ether lipids of methanogenic archaebac-teria.- Science. 1978, v.203, p.51-53.

187. Zhilina Т. The fine structure of Methanosarcina.

188. Microbiology. 1971, v.40, p.587-591.

189. Kandler 0., Koenig H. Chemical composition of the peptidoglycan free cell walls of methanogenic bacteria.-Arch. Microbiol. 1978, v.118, p.141-152.

190. Wolf H.J., Christiansen M., Hanson R.S. Ultrastructureof methanotrophic yeasts.- J. Bacteriol. 1980, v.141, N 3, p.1340-1349.

191. Pol A., Drift C., Van der Vogels G.D. Corrinoids from

192. Methanosarcina barker!: Structure of the o< -ligand.-Biochem. Biophys. Res. Commun. 1982, v.198, p.731-737.

193. Hausinger R.P., Moura I., Moura J.J.A., Xavier A.V.,

194. Gall J., Howard J.B. Amino acid sequence of a 3Pe:3S ferredoxin from the "Archaebacterium" Methanosarcina barkeri (DSM 800).- J. Biol. Chem. 1982, v.257, N 23, p.14192 14197.

195. Perry J.G., Wolfe R.S. Nutritional and biochemicalcharacterization of Methanospirillum hungatii.- Appl. Environ. Microbiol. 1977, v.33, p.528-537.

196. Wolfe R.S., Higgins I.J. Microbial biochemistry ofmethane a study in contrasts.- In: "Microbial biochemistry." (J.R. Quayle ed.). University Park Press. Baltimore. 1979, v.21, p.267-283.

197. Zeikus J.G., Wolfe R.S. Pine structure of Methanobacterium thermoautotrophicum: effect of growth temperature on morphology and ultrastructure.- J. Bacteriol. 1973, v.113, p.461-467.

198. Reddy С.A., Bryant M.P., Wolin M.J. Characteristics of Sorganism isolated from Methanobacillus omelianskii.- J. Bacterid. 1972, v. 109, p.539-545.

199. Sprott G.D., Sowden L.C., Covin J.R., Jarrell K.F.

200. Methanogenesis in the absence of intracytoplasmic membranes.- Can. J. Microbiol. 1984, v.30, N 5, p.594-604.

201. Sauer F.D., Mahadevan S., Erfle J.D. Methane synthesisby membrane vesicles and a cytoplasmic cofactor isolated from Methanobacterium thermoautotrophicum.- Biochem. J. 1984, v.221, N 1, p.61-69»

202. Kiener A., Holliger C., Leisinger Th. Analogue-resistant and auxotrophic mutants of Methanobacterium thermoautotrophicum. Arch. Microbiol. 1984, v.139, N 1, p.87--90.

203. Konstands H.G. Engineering, operation and economics ofmethane gas productions.- In: Microb. Energy Convers.(Proc, Semin., Gottingen 1976.) Oxford e.a., 1977, p.379-398.

204. Scherer P.A., Bochem H.P. Ultrastruetural investigationof 12 Methanosarcine and related species grown on methanol for occurrence of polyphosphatelike inclusions.-Can. J. Microbiol. 1983, v.29, N 9, p.1190-1199.

205. Mah R.A., Ward D.M., Baresi L., Glass T.L. Biogenesisof methane.- Ann. Rev. Microbiol. 1977, v.31, p.309-341.

206. Zeikus J.G., Wolfe R.S. Methanobacterium thermoautotrophicus sp. п., an anaerobic, autotrophic, extreme thermophile.- J. Bacterid. 1972, v. 109, N 2, p.707-713.

207. Zeikus J.G., Fuchs G., Kenealy W., Thauer R.K. Oxidoreductases involved in cell carbon synthesis of Methanobacterium thermoautotrophicum.- J. Bacteriol. 1977» v.132, p.604-613.

208. Ferry J.G., Wolfe R.S. nutritional and biochemical characterization of Methanospirillum hungatii.- Appl. Environ. Microbiol. 1977, v.34, p.371-376.

209. Fuchs G., Stupperich E., Thauer R.K. Function of fumarate reductase in methanogenic bacteria (Methanobacterium).-Arch. Microbiol. 1978, v.119, N 2, p.215-218.

210. Whitman W.B., Wolfe R.S. Activation of the methylreductase system from Methanobacterium bryantii by ATP. -J. Bacteriol, 1983, v.154, N 2, p.640-649.

211. Bryant M.P., Varel V.H., Frobish R.A., Isaacson H.R.

212. Biological potential of thermophilic methanogenesis from cattle wastes.- In: "Microb. Energy. Convers." (Proc. Semin., Gottingen 1976). Oxford e.a., 1977, p.347-359.

213. Scherer P., Kniefel H. Distribution of polyamines inmethanogenic bacteria.- J. Bacteriol. 1983» v.154, N 3, p.1315-1322.

214. Smith M, Reversal of 2 - Bromoethanesulfonate inhibition of methanogenesis in Methanosarcina sp.- J. Bacteriol. 1983, v.156, Ы 2, p.516-523.

215. Archer D.B. The microbiological basis of process controlin methanogenic fermentation of soluble wastes,- Enzyme and Microb. Technol. 1983, v.5, N 3, p.162-170.

216. Jack J.W., Paynter M.J.В., Gupta R. Characterization of

217. Methanococcus maripaludis sp. nov.- Arch. Microbiol.1983, v.135, p.91-97»

218. Jarrell K.F., Sprott G.D. The effects of ionophores andmetabolic inhibitors on methanogenesis and energy -related properties of Methanobacterium bryantii.- Arch. Biochem. Biophys. 1983, v.225, N 1, p.33-41.

219. Khan A.W., Mes - Hartree M. Metabolism of acetate andhydrogen by a mixed population of anaerobes capable of converting cellulose to methane.- J. Appl. Bacteriol. 1981, v.50, p.283-288.

220. Pine M.J., Barker H.A. Studies on the methane fermentation. XII. The pathway of hydrogen in the acetate fermentation.- J. Bacteriol. 1956, v.71, N 6, p.644-648.

221. Pine M.J., Vishniac W. The methane fermentations ofacetate and methanol.- J. Bacteriol. 1957, v.73,p.736--742.

222. Zehnder A.J.B., Huser B.A., Brock T.D., Wuhrmann K.

223. Characterization of an acetate-decarboxylating, non-hydrogen oxidizing methane bacterium.- Arch. Microbiol.1984, v.124, p.1-11.193 "Van den Berg L., Lamb K.A., Murray W.D., Armstrong D.W.

224. Effects of sulphate, iron and hydrogen on the microbiological conversion of acetic acid to methane.- J. Appl. Bacteriol. 1980, v.48, p.437-447.

225. Pretorius W.A. The effect of formate on the growth ofacetate utilizing methanogenic bacteria.- Water. Resour. 1972, v.6, p.1213-1217.

226. Van den Berg L., Patel G.B., Clark D.S., Lentz C.P.

227. Factors effecting rate of methane formation acetic acid by enriched methanogenic cultures.- Can. J. Microbiol. 1976, v.22, p.1312-1319.

228. Bares L., VYolfe R.S. bevels of coenzyme M, hydrogenase,and methyl с о enzyme M methylreductase in acetategrown Methanosarcina.- Appl. Environ. Microbiol. 1981, v.41» N 2, p.386-391.

229. Krzycki J.A., Wolkin R.H., Zeikus J.G. Comparison ofunitrophic and mixotrophic substrate metabolism by an acetate- adapted strain of Methanosarcina barkeri.- J. Bacteriol. 1982, v.149, N 1, p.247-254.

230. Weimer P.J., Zekus J.G. Acetate metabolism in Methanosarcina barkeri.- Arch. Microbiol. 1978, v.119, p.175--182.

231. Winfrey M.R., Zeikus J.G. Microbial methanogenesis andacetate metabolism in a meromictic lake.- Appl. Environ. Microbiol. 1979, v.37, N 2, p.213-221.

232. Colvin J.R., Sowden L.S., Van den Berg L. The fcltrastructure of the major species of an enriched methanogenic culture utilizing acetic acid.- Can. J. Microbiol. 1979, v.27, N 7, p.826-832.

233. Hoban D.J., Van den Berg L. Effect of iron on conversionof acetic acid to methane during methanogenic fermentations.- J. Appl. Bacteriol. 1979, v.47, p.153-159.

234. Smith M.R., Mah R.A. Acetate as sole carbon and energysource for growth of Methanosarcina Strain 227.- Appl. Environ. Microbiol. 1980, v.39, p.993-999.

235. Powell G.E., Hilton M.G., Archer D.B., Kirsop B.H.

236. Kinetics of the methanogenic fermentation of acetate.-J. Chem. Technol, Biotechnol. 1983, В 33, N 4, p.209--215.

237. Blaut M., Gottschalk G. Effect of trimethylamine on acetate utilization by Methanosarcina barkeri.- Arch. Microbiol. 1982, v.133, N 3, p.230-235.

238. Oberlies G., Fuchs G., Thauer R.K. Acetate thiokinaseand the assimilation of acetate in Methanobacterium thermoautotrophicum.- Arch. Microbiol. 1980, v.128, U 2, p.248-252.

239. Zeikus J.G., Weimer P.J., Nelson D.R., Daniel L. Bacterial methanogenesis: acetate as a methane precursor in pure culture.- Arch. Microbiol.1975, v.104, p.129--134.

240. Van den Berg L. Effect of temperature on growth andactivity of a methanogenic culture utilizing acetate.-Can. J. Microbiol. 1977, v.23, p.898-902.

241. Fuchs G., Stupperich E., Thauer R.K. Acetate assimilation and the synthesis a alanine, aspartate and gluta-mate in Methanobacterium thermoautotrophicum.- Arch. Microbiol. 1978, v.117, p.61-66.

242. Smith M.R., Zinder S.H., Mali R.A. Microbial methanogenesis from acetate.- Process. Biochem. 1980, v.15, N 4, p.34-39.

243. Zinder S.H., Koch M. Non-aceticlastic methanogenesisfrom acetate; acetate oxidatipn by a thermophilic syntrophic coculture.-Arch. Microbiol. 1984, v. 138, IT 3, p.263-272.

244. Mah R.A., Smith M.R., Baresi L. Studies oil an acetate fermenting strain of Methanosarcina.- Appl. Environ. Microbiol. 1978, v.35, p.1174-1184.

245. Weimer P.J., Zeikus J.G. Acetate assimilation pathwayof Methanosarcina barkeri.- J. Bacteriol. 1979, v.137, p.332-339.

246. Weimer P.J., Zeikus J.G. One carbon metabolism inmethanogenic bacteria: cellular characterization and growth of Methanosarcina barkeri.- Arch. Microbiol. 1978, v.119, p.49-57.

247. Sansone F.J., Martens C.S. Methane production fromacetate and associated methane fluxes from anoxiccoastal sediments.- Science, 1981, v.221, p.707-709.

248. Mountfort D.O., Asher R.A. Changes in proportions ofacetate and carbon dioxide used as methane precursors during the anaerobic digestion of bovine waste.- Appl. Environ. Microbiol. 1978, v.35, p.648-654.

249. Winfrey M.R., Ward D.M. Substrate for sulfate reduction and methane production in intertidal sediments.-Appl. Environ. Microbiol. 1983, v.45, N 1, p.193-199.

250. Capone D.G., Reese D.D., Kiene R.P. Effects of metals onmethanogenesis, sulfate reduction, carbon dioxide evolution, and microbial biomass in anoxic salt marsh sediments.- Appl. Environ. Microbiol. 1983, v.45, N 5, p.1586--1591.

251. Lovley D.R., KLug M.J. Sulfate reducers can outcompetemethanogens at freshwater sulfate concentrations.- Appl. Environ. Microbiol. 1983, v.45, N 1, p.187-192.

252. Robinson J.A., Tiedje J.M. Competition between sulfatereducing and methanogenic bacteria for H2 under resting and growing conditions.- Arch. Microbiol. 1984, v.137, N 1, p.26-32.

253. Daniels L., Pulton G., Spencer R.W., Orme-Johnson W.H.

254. Origin of hydrogen in methane produced by Methanobacterium thermoautotrophicum.- J. Bacteriol. 1980, v.141, N 2, p. 694-698.

255. Abram J.W., Nedwell D.B. Hydrogen as a substrate formethanogenesis and sulfate reduction in anaerobic Salt-marsh sediment.- Arch. Microbiol. 1978, v.117, p.93-97.

256. Stumm C.K., Gijgen H.J., Vogels Association of methanogenic bacteria with ovine rumen cillates.- Br. J. Nutr. 1982, v.47, p.95-99.

257. Oremland R.S., Polcin S. Methanogenesis and sulfate reduction: competitive and noncompetitive substrates in estu-arine sediments.- Appl. Environ. Microbiol. 1982, v.44, N 6, p.1270-1276.- 259

258. Mountfort D.O., Asher R.A. Role of sulfate reductionversus methanogenesis in terminal carbon flow in polluted intertidal sediments of Waimea. Inter. Nelson, Hew Zealand.» Appl. Environ. Microbiol. 1981, v.42, p.252-258.

259. Stupperich E., Fuchs G. Autotrophic acetyl coenzyme A synthesis in vitro from two C02 in Methanobacterium.- PEBS Lett. 1983, v.156, N 2, p.345-348.

260. Whitman W.B., Ankwanda E., Wolfe R. Nutrition and carbonmetabolism of Methanococcus voltae.- J. Bacteriol. 1982,v.149, N 3, p.852-863.

261. Hansson G. Effects of carbon dioxide and methane onmethanogenesis.- Eur. J. Appl. Microbiol. Biotechnol. 1979, v.6, p.351-359.

262. Romesser J.A., Wolfe R.S. Coupling of methyl coenzyme Mreduction with carbon dioxide activation in extracts of Methanobacterium thermoautotrophicum.- J. Bacteriol. 1982, v.152, N 2, p.840-847.

263. Puchs G., Stupperich E. Acetyl CoA, a central intermediateof autotrophic C02 fixation in Methanobacterium thermoautotrophicum.- Arch. Microbiol. 1980, v.127, N 3, p.267--272.

264. Stephenson M., Stickland L.H. The bacterial formationof methane by the reduction of one carbon compounds by molecular hydrogen.- Biochem. J. 1983, v.27, p.1517-1527.

265. Gunsalus R.P., Wolfe R.S. Stimulation of CC>2 reduction tomethane by methyl coenzyme M in extracts of Methanobacterium.- Biochem. Biophys. Res. Commun. 1977, v.76, p.790-795.

266. Mah R.A., Smith M.R., Ferguson Т., Zinder S. Methanogenesisfrom Hg COg, methanol and acetate by Methanosarsina.-In: "Microbial growth on compounds". (H. Dalton ed.) Heyden and Son, Ltd. London, 1981, p.131-142.

267. Hutten T.J., Bongaerts H.C.M., Van der Drift C., Vogels

268. G.D. Acetate, methanol and carbon dioxide as substrates for growth of Methanosarcina barkeri.- Antonie van Leeu-wenhoek. 1980, v.46, p.601-610.

269. Hutten T.J., De Jong M.H., Peeters В- P.H., Van der Drieft

270. C., Vogels G.D. Coenzyme M derivatives and their effectson methane formation from carbon dioxide and methanol by cell extracts of Methanosarcina barkeri.- J. Bacterid., 1981, v.145, N 1, p.27-34.

271. Daniels L., Zeikus J.G. One-carbon metabolism in methanogenic bacteria : analysis of shortterm fixation products of 1^C02 and CH^OH incorporated into whole cells.- J. Bacterid. 1978, v. 136, И 1, p.75-84.

272. Lovley D.R., Klug M.J. Methanogenesis from methanol andmethylamines and acetogenesis from hydrogen and carbon dioxide in the sediments of eutrophic lake.- Appl. Environ. Microbiol. 1983, v.45, N 4, p.1310-1315.

273. Zinder S.H., Mah R.A. Isolation and characterisation of athermophilic strain of Methanosarcina unable to use H2 -C02 for methanogenesis.- Appl. Environ. Microbiol. 1979, v.38, N 5, p.996-1008.

274. Asinari C.M., Marzano D., Binot R., Bol 0?., Pripiat J.L.,

275. Hutschenmakers J., Melchior J.-L., Perez I», Naveau H., Nyns E.-J. Volative fatty acids, an important state parameter for the control of the reliability and the productivities of methane anaerobic digestions.- Biomass 1981,v.1, Ho.1, p.47-59.

276. Daniels L., Fuchs G., Thauer R.K., Zeikus J.G. Carbonmonoxide oxidation by methanogenic bacteria.- J. Bacteriol. 1977, v.132, N 1, p.118-126.

277. Kluyver A.J., Schnellen C.G. On the fermentatipn of carbon monoxide by pure cultures of methane bacteria.- Arch. Biochem. 1947, v.14, p.57-70.

278. Miller T.L., Wolin M.J, Oxidation of hydrogen and reduction of methanol to methane is the sole energy source for a methanogen isolated from human feces.- J. Bacteriol. 1983, v. 153, N 2, p.Ю51-Ю55.

279. Shapiro S. Do corrinoids function in the methanogenic dissimilation of methanol by Methanosarcina barkeri.- Can.J. Microbiol. 1982, v.28, p.629-635.

280. Moura I., Moura J.J.G. et al. Proteins containing the factor F430 *rom Methanosarcina barkeri and Methanobacterium thermoautotrophicum. Isolation and properties.- Biochim. Biophys. acta. 1983, v.742, N 1, p.84-90.

281. Van der Meijden P., Heythuysen H.J. et al, Methyltransferases involved in methanol conversion by Methanosarcina bar-keri.- Arch. Microbiol. 1983, v.134, N 3, p.238-242.

282. Smith M.R., Mah R.A. Growth and methanogenesis by Methanosarcina strain 227 on acetate and methanol.- Appl. Environ. Microbiol. 1978, v.36, N 6, p.870-879.

283. Stadtman Т.О., Barker H.A. Studies on the methane fermentation. IX. The origin of methane in the acetate and methanol fermentation by Methanosarcina.- J. Bacteriol. 1951, v.61, p.81-86.

284. Hippe H., Caspari D., Fiebig K., Gottschalk G. Utilization of trimethylamine and other N- methyl compounds for growth and methan formation by Methanosarcina barkeri.-Proc. Natl. Acad. Sci USA, 1979, v.76, N 1, p.494-498.

285. Patterson J.A., Hespeil R.B. Trimethylamine and methylamine as growth substrates for rumen bacteria and Methanosarcina barkeri.- Curr. Microbiol. 1979, v.3, p.79-83.

286. Wood J.M., Wolfe R.S. Components required for the formation of CH^ from methylcobalamin by extracts of Methanobacillus omelianskii.- J. Bacteriol. 1966, v.92, N 3» p.696-700.

287. Blaylock B.A., Stadtman T.C. Biosynthesis of methane fromthe methyl moiety of methylcobalamin.- Biosynthesis of methane from the methyl moiety of methylcobalamin.- Biochem. Biophys. Res. Comraun. 1963, v.11, p.34-38.

288. Schrauzer G.N., Grate J.H., Nathan K.R. Coenzyme M and

289. Methylcobalamin in methane biosynthesis: results of model studies.- Bioinorg. Chem. 1978, v.8, N 1, p.1-10.

290. Панцхава E.C., Сыромятников Е.Ю. Участие субклеточных частиц в образовании метана из CH^Bjg бесклеточными.экстрактами-^. kuzneceovii.- ДАН CCCP.I973,T.2II,P2, с.488-490.

291. Панцхава Е.С., Пчелкина В.В., Букин В.И. Образование метанаи уксусной кислоты из метилкобаламина бесклет. экстрактами Methanobacillus kuzneceovii.- Биохимия,1973,Т.38,с.507-514.

292. Панцхава Е.С. Роль корриноидов в биосинтезе метана у

293. Methanobacillus kuzneceovii.- Докт. диссерт. АН СССР. М. 1978, 300 с.

294. Панцхава Е.С., Букин В.Н. Роль пиридиновых нуклеотидов вобразовании метана из CHgBjg экстрактами М. kuzneceovii. ДАН СССР. 1974, Т.215, с.1255-1257.

295. Leigh J.A. Levels of water - soluble vitamins in methanogenic and non-methanogenic bacteria.- Appl. Environ.Microbiol. 1983, v.45, N 3, p.800-803.

296. Walther R., Fiebig K. et al. Growth of methanogens on raethylamines.- In: "Microbial growth on C1 compounds".-м

297. H.Dalton ed.). Heyden and Son, Ltd London, 1981,p. 146-151.

298. Wood J.M., Moura I. et al. Role of vitamin B12 in methyltransfer for methane biosynthesis by Methanosarcina barker!.- Science, 1982, v.216, p.303-305.

299. Gunsalus R.P., Wolfe R.S. ATP activation and propertiesof the methyl coenzyme M reductase system in Methano-bacterium thermoautotrophicum.- J. Bacteriol. 1978, v.135, И 3, p.851-857.

300. Balch W.E., Wolfe R.S. Transport of coenzyme M (2- mercaptoethanesulfonic acid) in Methanobacterium ruminatium.-J. Bacteriol. 1979, v.137, N 1, p.264-273.

301. Balch W.E., Wolfe R.S. Specificity and biological distribution of coenzyme M (2- mercaptoethanesulfonic acid).- J. Bacteriol. 1979, v.137, N 1, p.256-263.

302. Romesser J.A., Balch W.E., Coenzyme M: preparation andassay.- Methods Enzymol. 1980, v.67, p.545-552.

303. Vogels G.D., Keltjens J.Т., Hutten T.J., Van der Drift C.

304. Coenzymes of methanogenic bacteria.- Zentralbl. Mikro-biol. Hyg. Abt I Orig. Ser. 1982, С 3: p.258-264.

305. Kelt;)ens J.Т., Whitman W.B. et al. Presence of coenzyme

306. M derivates in the prosthetic group (coenzyme M P430) methylсоenzyme M reductase from Methanobacterium thermoautotrophicum.- Biochem. Biophys. Res. Commun. 1982, v. 108, p.495-503.

307. Van der Meijden P., Heythuysen H.J. et al. Activationand inactivation of methanol: 2 mercaptoethanesulfonicacid methyltransferase from Methanosarcina barkeri.- J. Bacteriol. 1983, v.153, U 1, p.6-11.

308. Nagle D.P., Wolfe R.S. Component A of the methyl coenzyme M methylreductase system of methanobacterium: resolution into four components.- Proc. Nat. Acad. Sci USA. Biol. Sci 1983, v.80, N 8, p.2151-2155.

309. Romesser J.A., Wolfe R.S. Interaction of coenzyme M andformaldehyde in methanogenesis.- Biochem. J. 1981, v.187,p.565-571.

310. Lovley D.R., Greening R.C., Perry J.G. Rapidly growing rumen methanogenic organism that synthesizes coenzyme M and has a high affinity for formate.- Appl. Environ. Microbiol. 1984, v.48, N 1, p.81-87.

311. Van der Meijden P., Brommelstroet B.W., Poirot C.M., Vander Drift C., Vogels G.D. Purification and properties of Methanol: 5 Hydroxybenzimidazolylcobamide methyltransferase from Methanosarcina barkeri- J. Bacteriol. 1984, v.160, N 2, p.629-635»

312. Balch W.E., Wolfe R.S. Hew approach to the cultivationof methanogenic bacteria: 2 mercaptoethanesulfonic acid (HS - CoM) - dependent growth of Methanobacterium rumina-tium in a pressurized atmosphere.- Appl. Environ. Microbiol. 1976, v.32, p.781-791.

313. Mc Bride B.C., Wolfe R.S. A new coenzyme of methyltransfer,coenzyme M.- Biochemistry, 1971, v.10, p.2317-2324.

314. Taylor C.D., Wolfe R.S. A simplified assay for coenzyme M (HSCH2 CH2 S0^). Resolution of methylсobalamin coenzyme M methyltransferase and use of a sodium borohydride.

315. J. Biol. Chem. 1974, v.249, p.4886-4890.

316. Taylor C.D., Mc Bride B.C., Wolfe R.S., Bryant M.P. Coenzyme M, essential for growth of a rumen strain of Methanobacterium ruminatium.- J. Bacteriol. 1974, v.120, p.974-975.

317. Shapiro S., Wolfe R.S. Methyl- Coenzyme M, an intermediatein methanogenic dissimilation of C^ compounds by Methanosarcina barkeri.- J. Bacteriol. 1980, v.141, N 2, p.728--734.

318. Taylor C.D., Wolfe R.S. Structure and methylation of coenzyme M (HSCH2 CH2 SO^).- J. Biol. Chem. 1974, v.249, p.4897-4885.

319. Hermans J.M.H., Hutten T.J., Van der Drift C., Vogels G.D.

320. Analysis of coenzyme M ( 2 mercaptoethanesulfonic acid) derivatives by isotachophoresis.- Anal. Biochem. 1980, v.106, p.363-366.

321. Stadtman T.C., Barker H.A. Studies on the methane fermentation. X. A new formate decomposing bacterium, Methano-coccus vannielii.- J. Bacteriol. 1951, v.62, p.269-280.

322. Pina L.R., Sincher H.J., De Cou D.F. Evidence for production of methane from formic acid by direct reduction.-Arch. Biochem. Biophys. 1960, v.91, p.159-162.

323. Schauer U.L., Brown D.P., Perry J.G. Kinetics of formatemetabolism in Methanobacterium formicium and Methanospiri-llum hungatei.- Appl. Environ. Microbiol. 1982, v.44, p.549-554.

324. Schauer N.L., Perry J.G. Metabolism of formate in Methanobacterium formicium.- J. Bacteriol. 1980, v.142, p.800-807.

325. Winter J.L., Wolfe R.S. Methane formation from fructoseby syntrophic associations of Acetobacterium woodii and different strains of methanogens.- Arch. Microbiol. 1980, v.124» N 1, p.73-79.

326. Tarvin D., Buswell A.M. The methane fermentation oforganic acid and carbohydrates.- J. Am. Chem. Soc.1934, v. 56, p.1751-1775.

327. Heave S.L., Buswell A.M. The anaerobic oxidation offatty acids.- J. Am. Chem. Soc. 1930, v.52, p.3308-3314.

328. Fina L.R., Fiskin A.M. The anaerobic decomposition ofbenzoic acid during fermentation. II. Fate of carbons one and seven.- Arch. Biochem. Biophys. 1960, v.91, р.1бЗ-1б5.

329. Fina L.R., Bridges R.L., Coblents Т.Н., Roberts F.F. Theanaerobic decomposition of benzoic acid during methane fermentation III. The fate of carbon four and the identification of propionic acid.- Arch. Microbiol. 1978,v.118, p.169-172.

330. Keith C.L., Bridges R.L., Fina L.R., Iverson L.R.,

331. Cloran J.A. The anaerobic decomposition of benzoic acid during methane fermentation. IV. Dearomatization of the ring and volatile fatty acid formed on ring rupture.- Arch. Microbiol. 1978, v.118, p.173-176.

332. Shlomi E.R., Lankhorst A., Prins R.A. Methanogenic fermentation of benzoate in an enrichment culture.- Microbiol. Ecology. 1978, v.4, p.249-261.

333. Mclnercy M.J., Bryant M.P. Syntrophic associations of

334. Healy J.B., Young L.Y. Anaerobic biodegradation ofeleven aromatic compounds to methane.- Appl. Environ. Microbiol. 1979, v.38, N 1, p.84-89.

335. Healy J.B., Young L.Y. Catehol and phenol degradationby a methanogenic population of bacteria.- Appl. Environ. Microbiol. 1978, v.35, N 1, p.216-218.

336. Bryant M.P., Wolin E.A., Wolin M.J., Wolfe R.S. Methanobacterium omelianskii, a symbiotic association of two species of bacteria.- Arch. Mikrobiol. 1967, v.59, p.20-31.

337. Balba M.T., Evans W.C. Methanogenic fermentation of thenaturaly occuring aromatic amino acids by a microbial consortium.- Biochem. Soc. Trans. 1980, v.8, p.623-627.

338. Dwyer D.F., Tiedje J.M. Degradation of ethylene glycoland polyethylene glycols methanogenic consortia.- Appl. Environ. Microbiol. 1983, v.46, N 1, p.185-190.

339. Nagase M., Matsuo T. Interactions between amino-aciddegrading bacteria and methanogenic bacteria in anaerobic digestion.- Biotechnol. Bioeng. 1982, v.24, N 10, p.2227-2239.- 269

340. Healy J.В. Methanogenic decomposition of ferulic acid,a model lignin derivative.- Appl. Environ. Microbiol.1980, v.39, p.436-444.

341. Hobson P.N., McDonald I. Methane production from acidsin piggery waste digesters.- J. Chem. Technol. Bio-technol. 1980, v.30, N 7, p.405-408.

342. Traore A., Gaudin C., Hatchikian C.E., Le Gall J.,

343. Krumholz l.r., Forsberg с.v/. Association of methanogenic bacterial with rumen protozoa.- Can. J. Microbiol. 1983, v.29, N 6, p.676-680.

344. Vogels G.D., Stumm C. Interactions between methanogenicbacteria and hydrogenic ciliates in the rumen.- Antonie van Leeuwenhoek. 1980, v.46, N 1, p.108-109.

345. Fuchs G., Stupperich E. Evidence for an incomplete reductive carboxylic acid cycle in Methanobacterium thermoautotrophicum.- Arch. Microbiol. 1978, v.118,p.121-126.

346. Wolin M.J. Interaction between H2 producing and methaneitproducing species.- In: proceedings of the symposium on microbial production and utilization of gases (H2,CH^, C02)." Gottingen. 1976, p.141-150.

347. Van Brugger J.J.A., Stumm C.K., Vogels G.D. Symbiosisof methanogenic bacteria and sapropelic protozoa.- Arch. Microbiol. 1983, v.136, N 2, p.89-95.

348. Winter J., Wolfe R.S. Complete degradation of carbohydrate to carbon dioxide and methane by syntrophic cultures of Acetobacteriura woodii and Methanosarcina barke-ri.- Arch. Microbiol. 1979, v.121, p.97-102.

349. Бонч-Осмоловская E.A. Многофазность метанового броженияклечатки.- Микробиология, 1976, Т.45, с.234-240.311 — Vogels G.D. The global cycle of methane.- Antonic van1.euwenhoek. 1979. v.45, N 3, p.347-352.

350. Oi S., Tamura S., Nukina Y., Tanaka Т., Taniguchi M.

351. Бонч-осмоловская Е.А. Образование лактата в процессе метанового брожения целлюлозы.-Микробиол.1978,47,1014-1019.

352. Бонч-осмоловская Е.А. Последовательность образования газообразных продуктов при анаэробном разложении целлюлозыв присутствии некоторых акцепторов электрона.-Микробиол. 1978, Т.47, № 6, с.III2-III4.

353. Sineriz P., Pirt S.J. Methane production from glucoseby a mixed culture of bacteria in the chemostat: the role of Citrobacter.- J. Gen. Microbiol. 1977, v.101, p.57-64.

354. Rose C.S., Pirt S.J. Conversion of glucose to fattyacid and methane: Roles of two mycoplasmal agents.- J. Bacteriol. 1981, v.147, N 1, p.248-254.- 271

355. Kieboom A.P.G., Bekkum H. Aspects of the chemical conversion of glucose.- Rec. Trav. Chim. Pays-Bas. 1984, v.103, N 1, p.1-12.

356. Khan A.W., Trottier T.M. Effect of sulfur containing compounds on anaerobic degradation of cellulose to methaxLe by mixed culture obtained from sewage sludge.- Appl. Environ. Microbiol. 1978, v.35, p.1027-1034.

357. Khan A.W., Miller S.S., Murray W.D. Development . . of atwo-phase combination fermenter for the conversion of cellulose to methane.- Biotech. Bioeng. 1983, v.35, p.1571-1579.

358. Khan A.W., Trottier T.M., Patel G.B., Martin S.M. Nutrientrequirement for the degradation of cellulose to methane by a mixed population of anaerobes.- J. Gen. Microbiol.1979, v.212, p.356-372.

359. Weimer P.J., Zeikus J.G. Fermentation of cellulose andcellobiosee by Clostridium thermocellum in the absence and presence of Methanobacterium thermoautotrophicum.- Appl. Environ. Microbiol. 1977, v.33, p.289-297

360. Khan A.W. Anaerobic degradation of cellulose by mixed culture.- Can. J. Microbiol. 1977, v.23, p.1703-1705.

361. Mclnerney M.J., Bryant M.P. Anaerobic degradation of lactate by syntrophic associations of Methanosarcina barkeri and Desulfovibrio species and effect of Hg on acetate degradation.» Appl. Environ. Microbiol. 1981, v.41, И 2, p.346--354.

362. Reesen L., Strube R. Complete utilization of whey for alcohol and methane production.- Process Biochem. 1978, v.11, p.21-2Ц.

363. Bryant M.P., Campbell L.L., Reddy C.A., Crabill M.R.

364. Growth of Desulfovibrio in lactate or ethanol media low in sulfate in association with H2 utilizing methanogenic bacteria.- Appl. Environ. Microbiol. 1977, v.33, p.1162-1169.

365. Chen M., Wolin M.J. Influence of CH^ production by Methanobacterium ruminatium on the fermentation of glucose and lactate by Selenomonas iruninatium.- Appl. Environ. Microbiol. 1977, v.34, p.756-759.

366. Van Bruggen J.J.A., Zowart K.B., Van Assema R.M., Stumm

367. C.K., Vogels G.D. Methanobacterium formicicum, an ando-symbiont of the anaerobic ciliate Metopus striatus McMur-rich.- Arch. Microbiol. 1984, v.139, N 1, p.1-7.

368. Eikmanns В., Jaenchen R., Thauer R.K. Propionate assimilation by methanogenic bacteria.- Arch. Microbiol. 1983, v. 136, N 2, p.106-110.

369. Mclnerney M.J., Bryant M.P., Pfennig N. Anaerobic bacterium that degrades fatty acids in syntrophic association with methanogens.- Arch. Microbiol. 1979»,v.122, p.129-135.

370. Mackie R.J., Bryant M.P. Metabolic activity of fatty acidoxidizing bacteria and the contribution of acetate, propionate, bytyrate, and COg to methanogenesis in cattle waste at 40 and 60°C.- Appl. Environ. Microbiol. 1941, v.41, p.1363-1373.

371. Stadtman T.C., Barker H.A. Studies on the methane fermentation. VIII Tracer experiments on fatty acid oxidation by methane bacteria.- J. Bacteriol. 1951, v.61,p.67-80.

372. Wolfe R.S., Wolin M.J., Wolin E.A., Allam A.M., Wood J.M.

373. The biochemistry of methane formation in Methanobacillus omelianskii.- Develop. Ind. Microbiol. 1966, v.7, p.162--169.

374. Gunsalus R.P., Wolfe R.S. Methyl coenzyme M reductasefrom Methanobacterium thermoautotrophicum.- J. Biol.Chem. 1980, v.255, N 5, p.1891-1895.

375. Tzeng S.F., Wolfe R.S., Bryant M.P. Factor 420 - dependentpyridine nucleotide-linked hydrogenase system of Methanobacterium ruminatium.- J. Bacteriol. 1975» v. 121, IT 1, p.184-191.

376. Keltjens J.Т., Van Beelen P., Stassen A.M., Vogels G.D.

377. Methylpterin in methanogenic bacteria.- FEMS Microbiol. Lett. 1983, v.20, p.259-262.

378. Tzeng S.F., Bryant M.P., Wolfe R.S. Factor 420 - dependentpyridine nucleotid- linked formata metabolism of Methanobacterium ruminatium.- J. Bacteriol. 1975, v.121, И 1, p.192-196.

379. Eirich L.D., Vogels C.D., Wolfe R.S. Proposed structurefor coenzyme F^2q from Methanobacterium strain MoH.- Biochemistry. 1978, v.17, N 22, p.4583-4593.

380. Cheeseman P., Toms-Wood A., Wolfe R.S. Isolation and properties of a fluorescent compound, factor 420 from Methanobacterium strain MoH.- J. Bacteriol. 1972, v.112, p.527--531.

381. Nelson M.J.K.Brown D.P., Ferry J.G. FAD requirement for the reduction of coenzyme F420 by hydrogenase from Methanobacterium formicicum.- Biochem. and Biophys. Res.

382. Commun. 1984, v.120, И 3, p.775-781.

383. Schauer H.L., Perry J.G. PAD requirement for reduction ofcoenzyme ^420 formate dehydrogenase from Methanobacterium formicicum.- J. Bacteriol. 1983, v.155, N 2, p.467--472.

384. Rauhut R., Gabius H.-J., Kuhn W., Cramer P. PhenylalanyltRNA synthetase from the archaebacteriura Methanosarcina barkeri.- J. Biol. Chem. 1984, v.259, H 10, p.6340-6345.

385. Keltjens J.Т., Caerteling C. et al. 6,7 - dimethyl-8-ribityl-5,6,7,8 tetrahydrolumazine, a proposed constituent of coenzyme MF^q from methanogenic bacteria.- Biochim. Biophys. Acta, 1983, v.743, N 3, p.351-358.

386. Escalante-Semerena J.C., Leigh J.A., Rinenhart Jr.K.L.,

387. Wolfe R.S. Formaldehyde activation factor tetrahydrome-thanopterin, a coenzyme of methanogenesis.- Proc. Hat. Acad. Sci USA. Biol. Sci. 1984, v.81, И 7, p.1976-1980.

388. Van Beelen P., Labro J.F.A., Keltjens J.T., Geerts W.J.,

389. Vogels G.D., Laarhoven W.H., Guijt W., Haasnoot C.A.G. Derivatives of methanopterin, a coenzyme involved in methanogenesis.- Eur. J. Biochem. 1984, v.139, N 2, p.359-З65.

390. Escalante-Semerena J.C., Rinehart Jr.K.L., Wolfe R.S.

391. Tetrahydromethanopterin, a carbon carrier in methanogenesis.- J. Biol. Chem. 1984, v.259, N 15, p.9447-9455.

392. Leigh J.A., Wolfe R.S. Carbon dioxide reduction factorand methanopterin, two coenzymes required for C02 reduction to methane by extracts of Methanobacterium.- J.Biol, Chem. 1983, v.258, N 12, p.7536-7540.

393. Gudkov А.Т., Venyaminov S.Yu., Matheson A.T. Physicalstudies on the ribosomal "An protein from two archaebac-teria. Halobacterium cutirubrum and Methanobacterium thermoautotrophicum.- Can. J. Biochem. and Cell Biol. 1984, v.62, U 1, p.44-48.

394. Sobotke M., Votruba J., Havlik I., Minkevich I.G. Themass-energy blance of anaerobie methane production.-Polia Microbiol. 1983, v.28, p.195-204.

395. Clausen E.C., Sitton O.C., Gaddy J.L. Biological production of methane from energy crops.- Biotechnol. Bioeng. 1979, v, 21, U 7, p.1209-1219.

396. Chen Y.- R., Varel V.H., Nashmoto A.G. Methane production from agricultural residues. A short review.- Ind. Eng. Chem. Prod. Res. Develop. 1980, v.19, N 4, p.471--483.

397. Huibers D.T.A., Jones M.W. Fuel3 and chemical feedstocksfrom lignocellulotic biomass.- Can. J. Chem. Eng. 1980, v.58, И б, p.718-722.

398. Zeevalkins J.A., Maaskant W. Biogas from effluents ofstarch industries by anaerobic treatment.- Starke,1984, v.36, N 4, p.131-135.

399. Чан Динь Тоай, Хлудова М.С., Панцхава Е.С. Биогенезметана.- Итоги Науки и Техники. Сер. Биотехнология, T.I. "Биотехнология получения и трансформации топлив". ВИНИТИ. М, 1983, с.151-194.- 276

400. Hashimoto A.G. Methane production and effluent qualityfrom fermentation of beef cattle manure and molasses.-Biotechnol. Bioeng. Symp. 1981, 11, p.181.

401. Zeikus J.G. Chemical and fuel production by anaerobicbacteria.- Annu. Rev. Microbiol. 1980, v.34, p.423-464.

402. Mah R.A. Methanogenesis and methanogenic parnerships.

403. Phil. Trans. Roy. Soc. London. 1982, B.297. N 1084, p.599-616.

404. Заварзин Г.А., Бонч-Осмоловская E.A. Микробиологическоеполучение топлив.- Микробиология, 1977, Т.46, N 6, с.988-996.

405. Wase D.A.J,, Forster C.F. Biogas-Fact or fantase.- Biomass, 1984, v.4, p.127-142.

406. Chen R. The development of biogas utilization in China.

407. Biomass, 1982, v.1, N 1, p.39-46.

408. Food and agriculture organisation. China: azolla propagation and smal seal, biogas technology. Rome, 1978, 81 p.

409. Singh В., Khanduja S.D. Wood properties of some firewoodshrubs in northern India.- Biomass. 1984, v.4» p.235-238.

410. Dowglas J.J. Traditional fuel usage and the rural poorin Bangladesh.- World. Development. 1982, v. 10, IT 8, p.669-676.

411. Kennes W., Parikh J.K., Stolwijk H. Energy from biomass by

412. Bangladesh.- Biomass. 1984, v.4, p.209-234.

413. Matsuda S., Kubota H. The feasibility of national fuelalcohol programs in southeast asia.- Biomass. 1984, v.4, p.161-182.

414. Sing S.P. Fuelwood as energy source.- Ind. For 1981,v.107, p.785-794.- 277

415. Gosling D. Biogas for thailand's rural development:

416. Transferring the technology.- Biomass. 1982, v.2, p.309--316.

417. Tuntawiroon U. Environmentel impact of industrializationan Thailand. Contemporary southeast asia.- Biomass,1982, v.4, p. 396-380.

418. Chen T.S. Industrial fermentation in China.- J. Chem.

419. Tech, Biotechnol. 1982, v.32, p.669-673.

420. Pimentel D., Nafus D., Vergara W., Papoy D., Jaconetta L.,

421. Wulfe M., Olsvig L., Freeh К., Loye M., Mendoza E. Biological solar energy conversion and US energy policy.-Bioscience. 1978, v.28, p.376-382.

422. Verrier D., Morfaux J.N., Albagnac G., Touzel J.P.

423. France). The French programe on methane fermentation.-Biomass. 1982, v.2, H 1, p.17-28.

424. Matsuda S., Kubota H. Energy consumption in agriculture.- Energy Developments in Japan. 1983, v.5, p.273-286.

425. Silverside C.R. Energy from forest biomass. Its effecton forest management practices in Canada.- Biomass, 1982, v.2, IT 1, p.29-42.

426. Hall D.O., Coombs. Green energy in Japan.- Biomass.1982, v.1, N 2, p.89-92.

427. Mc Carty P.L., Young L.Y., Sturkey D.C., Healy J.B.Jr.

428. Heat treatment for increasing methane yiels from organic materials.- In: "Microbial, Energy Conversion". (Eds H.G. Schlegel, J. Barnea. Gottingen, Goltze,1976). Oxford e.a. 1977, p.179-199.

429. Варфоломеев С.Д. Физико-химические проблемы конверсии энергии биокаталитическими системами . Докт. диссер. МГУ, М, 1978, 346 с.

430. Clausen Е.С., Siton, О.С., Gaddy J.L. Disign and economic of methan production from crop materials.- Am. Inst. Chem. Eng. Symp. Ser. 1978, v.74, N 172, p.110-116.у, 1Й7819Wf^iOO с.

431. Лер.Р. Переработка и использование сельскохозяйственныхотходов. "Колос", М, 1979, 300 с.

432. Meile L., Leisinger Т. Enzymes of arginine biosynthesisin methanogenic bacteria.- Experientia, 1984, v.40, N 8, p.899-900.

433. Пацхава E.C., Быховский В.Я. Биохимические и микробиологические закономерности биосинтеза витамина В^ ПРИ теР~ мофильном метановом брожении.- Прикладная биохимия и микробиология. 1965, T.I, с.37-45.

434. Букин В.Н., Быховский В.Я., Панцхава Е.С. Биохимическиеи микробиологические основы промышленного получения витамина Bjg методом термофильного метанового брожения. "Наука", М., 1971, с.9-24.

435. Stupperich Е., Puchs G. Autotrophic synthesis of activated acetic acid from two C02 in Methanobacterium thermoautotrophicum. I. Properties of in vitro system.- Arch. Microbiol. 1984, v.139, К 1, p.8-13.

436. Stupperich E., Puchs G. Autotrophic synthesis of activated acetic acid from two C02 in Methanobacterium thermoautotrophicum. II. Evidence for different origins of acetate carbon atoms.- Arch. Microbiol. 1984, v.139, И 1, p.14-20.

437. Панцхава Е.С., Пчелкина В.В. Корриноидные соединения, синтезируете выделенным новым видом метанообразующих бактерий. ДАН СССР$ 1968, Т.182, с.457-458.

438. Жилина Т.Н., Чудина В.И.,и др. Термофильные метанообразующие бактерии из метилотрофных ассоциации "Methanobacillus kuzneceovii".- Микробиология, 1983, Т.52, Р 2,с.328-334.

439. Панцхава Е.С. Влияние Ыа-бензилпенициллиновой соли наобразование метана метаногенной ассоциацией Methanobacillus kuzneceovii.- Микробиол. Ж. 1982, Т.44, Р 4, с.60-64,109.

440. Иларионов С.А. Характеристика Clostridium 99 термофильной метилотрофной бактерии.- В сб. тез. докл., стенд, сообщений на всесоюз. конф.: "Термофильные микроорганизмы в природе и практике народного хозяйства",М., 1983, с.56.

441. Джексен Д. Этилен и полиацетилены. В сб. "Биохимия растений". "Мир", М., 1968, с.389-402.

442. Fukuda Н., Fujii Т., Ogawa Т. Microbial production of С2hydrocarbons, ethane, ethylene and acetylen.- Agr. and Biol. Chem. 1984, v.48, N 5, p.1363-1365.14

443. Stupperich E., Fuchs G. Products of COg fixation and Relabelling pattern of alanine in Methanobacterium thermo14autotrophicum pulse labelled with 4J02.- Arch. Microbiol. 1981, v.130, p.294-300.

444. Langworthy Т.к., Tornabene T.G., Holrer G. Lipids ofarchaebacteria.- In Archaebacteria, ed. 0. Kandler, Stutt-gard. New York. 1982, p.228-244.

445. Панцхава Е.С., Пчелкина В.В. Метановое брожение метилового спирта.- Прикл. биохим. и микробиол.,1969,5,416-420

446. Oi S., Yamanaka Н., Yamamoto Т. Methane fermentation ofbagasse and some factors to improve the fermentation.-J. Ferment. Technol. 1980, v.58, N 4, p.367-372.

447. Clausen E.C., Gaddy J.L. Bioconversion of agriculturalresidues to methane.- Am. Inst. Chem. Eng. Symp. Ser. 1978, v.74, N 172, p.105-109.

448. Clausen E.C., Gaddy J.L. Seperate-stage fermentation ofbromass to methane.- Am. Inst. Chem. Eng. Symp. Ser. 1978, v.74, N 181, p.56-68.

449. Gottschalk G. Bacterial metabolism. Spring-Verlag Berlin

450. Heidenberg New York 1979. Russ. Trans."Mir", М.1982» 310 p.

451. Weber H., Kuble K.D., Chmiel H., Trosch W. Microbialacetate conversion to methane: Kinetics, yields and pathways via twostep digestion process.- Appl. Microbiol. Biotech. 1984, v.19, И 4, p.224-228.

452. Спивак С.И. О неединственности решения задач восстановления констант химической кинетики и констант химических равновесий.- В кн. Математические проблемы химической термодинамики. "Наука", Новосибирск, 1980, с.63-72.- 281

453. Ахунов Н.Р., Ахмадишин З.Ш., Спивак С.И. Математическаяинтерпретация.химического эксперимента сложных реакций яидкофазного окисления.- Хим. физика, 1982,1,12,1660-1665.

454. Мс Carty P.L., Young L.Y., Stuckey D.C., Healy J.В. Jr.

455. Heat treatment for increasing methane yiels from organic materials.- In: "Microbial Energy Conversion" (Eds. H.G. Sehlegel, J. Barnea. Gottingen, Goltze, 1976), Oxford e.a.1977, p.179-200.

456. Detroy R.W., Lindenfelser L.A., Julian Jr.G.S.T., Orton

457. W.L. Saccharification of wheat-straw cellulose by enzymatic hydrolysis following fermentative and chemical pre-treatment.- Biotechnol. Bioeng. Symp. 1930, N 10, p.135--148.

458. Han Y. V/., Chen W.P. Effect of refiner defibrizing on thefermentability of ryegrass straw.- Biotechnol. Bioeng.1978, v.20, p.567-575.

459. Detroy R.W., Julian G.St. Biomass conversion: Fermentation chemicals and Fueld.- CRC Crit. Rev. Microbiol.1983, v.10, U 3, p.203-228.

460. Varel V.H., Hashimoto A.G., Chen Y.R. Effect of temperature and retention time on methane production from beef cattle waste.- Appl. Environ. Microbiol. 1980, v.40, p.217-222.

461. Hashimoto A.G., Methane from cattle waste: effects oftemperature, hydrolic retention time, and influent substrate concentration on kinetic parameter (k).- Biotechnol. Bioeng. 1982, v.24, IT 9, p.2039-2052.

462. Kumakura M., Kojima Т., Kaetsu I. Pretreatment lignocellulosic wastes by combination of irradiation and mechanical crushing.- Biomass. 1982, v.2, N 4, p.299-308.

463. Kumakura M., Kaetsu I. Radiation-induced decompositionand enzymatic hydrolysis of cellulose. Biotechnol. Bioeng. 1978, v.20, p.1309-1315.

464. Han Y. W., Timpa J., Ciegier A., Courtney J., Curry W.,1.mbremont A. ^ -ray-induced degradation of lignocellu-losic materials. Biotechnol. Bioeng. 1981» v.23, p.2525--2528.

465. Kumakura M., Kaetsu I. Radiation degradation and the subsequent enzymatic hydrolysis of waste papers. Biotechnol. Bioeng. 1982, v.24, p.991-997.

466. Чан Динь Тоай, Медман Д.Я., Рувинов С.Б. Культивирование

467. Roels О.А., Laurence S., Parmer M.W. Organic productionpotential of artifical upwelling marine culture.- In: "Microbial Energy Conversion". (Ed. H. Schlegel, J. Barnea. Gottingen. Goltze E., 1976). Oxford e.a. 1977, p.399-412.

468. Nguyen H.T., Vo M.K., Nguyen Q.T. Researches on the coefficient of using photic energy by Azolla in field.- Agricultural Sciens and Techniques (Viet Nam), 1982, v.10, p.449--452.

469. Шепелев Е.Я., Нгуен тхыок., Мелешко Г.И., Антонян А.А. и др.

470. Физиолого-экологические характеристики водного папортника Azolla pinnata и перспективность его использования в биологических системах жизнеобеспечения /БСЖО/ человека.- Космическая биология и авиакосмическая медицина, 1983, № 5, 6669.

471. Jurgens U., Warth R., Weckesser J. Chemical ana-JLysis ofthe peptido glucan of the cyanobacterium Synechocystis PCC 6714.- Zbl. Bakteriol. 1982, Abt 1 C, 3, N 4, 539.

472. Березин И.В., Варфоломеев С.Д., Зайцев С.В. Биофотолиз воды.- ДО СССР, 1976, Т.229, № I, с.94-97.

473. Зайцев С.В. Исследование модельных систем биофотолиза воды.- Канд. диссерт. МГУ., М., 1978, 170 с.

474. Rao К.К., Bruce D.L., Gisby Р.Е., Muallem A., Hall D.O.

475. Biophotolysis of water for hydrogen production via natural and artificial, catalytic systems.- "Photochem. Photoelectro-chem. Photobiol. Process. Proc. EC Contract. Meet., Cadar-' ache, 26-28 Oct, 1981", Dordrecht e.a. 1982, p.195-202.

476. Cocquempot M.E., Garde V., Larrete Thomasset В., Lissolo Т.,

477. Cavil M. Solar energy by photosynthesis.- Science, 1974,v.184, p.375-384.425 " Конев С.В., Волотовский И.Д. Фотобиология. Изд. БГУ.,1. Минск. 1979, 383 с.

478. Персанов В.М., Гоготов И.Н., Гинс В.К., Мухин Е.М. Фотовыделение водорода хлоролластами разных растений.- физиология растений, 1977, Т.24, с.699-703.

479. Красновский А.А., Никандров В.В., Брин Г.П., Гоготов И.Н.,

480. Ощепков В.П, Фотообразование водорода в растворах хлоро-фила, НАД-Н и хлоропластах.- ДАН СССР, 1975, Т.225,711-713.

481. Красновский А.А., Чан ван Ни и др. Исследование условийэффективного фотовыделения водорода хлоролластами в присутствии бактериальной гидрогеназы.- Мол. биол. 1980, Т.14, с.287-298.

482. Зацепин С.С., Ходяаев М.Д. и др. Еиофотолиз воды в системах микроорганизмов. II Всесоюзный симпозиум по получению и применению иммобилизов. ферментов. Абовян, 1977, с.151.

483. Hall D.0. Photobiological energy conversion.- PEBS Letters,1976, v.64, p.6-16.

484. Rao K.K., Rosa L., Hall D.O. Prolonged production ofhydrogen gas by a chloroplast biocatalytic system.- Biochem. Biophys. Res. Commun. 1976, v.68, N 1, p.21-28.

485. Pow I., Krasna A.I. Photоproduction of hydrogen fromwater in hydrogenase containing algae.- Arch. Biochem. and Biophys. 1979, v.194, N 2, p.413-421.- 285

486. Hoffman D., Thauer R., Trebst A. Phot о synthetic H2 byspinach chloroplasts coupled to a Clostridium hydrogenase.- Z. Naturforch. 1977, 32 C, N 3-4, p.257-262.

487. Reeves S.G., Rao K.K., Rosa L., Hall D.O. Biocatalyticproduction of hydrogen.- "Microb. Energy. Convers." (Proc. Semin. Gottingen 1976), Oxford e.a. 1977, p.235--243.

488. Packer L., Tel - Or E., Papageorgion G. The potentialof H2 production of photоsynthetic preparations from cholaplasts and cyanobacteria.- Living Syst. Energy Convert. Amsterdam e.a., 1977. p.129-134.

489. Rao K.K., Muallem A., Bruce D.L., Smith G.D., Hall D.O.1.mobilization of chloroplasts algae and hydrogenases in various solid supports for the photoproduction of hydrogen.- Biochem. Soc. Trans. 1982, v.10, N 6, p.527-528.

490. Greerbaum Elias. Photosynthetic hydrogen and oxygenproduction: Kinetic studies.- Science, 1982, v.215, N 4530, p.291-293.

491. Krasnovsky A.A., Semenova A.N., Nikandrov V.V. Chlorophyll containing liposomes photoreduction of methyl viologen and photoproduction of hydrogen. Photobiochem. Photobiophys. 1982, v.4, N 4, p.227-232.

492. Rosen M.M., Krasna A.I. Limiting reactions in hydrogenphotoproduction by chloroplasts and hydrogenase.- Photo-chem. and photobiol. 1980, v.31, N 3, p.259-265.

493. Benemann J.R., Weissman J.C. Biophotolysis : problemsand prospects. "Microb. Energy Convers". (Proc. Semin., Gottingen, 1976). Oxford e.a., 1977, p.413-426.

494. Smith G.D., Muallem A., Hall D.O. Hydrogenase - catalyzedphotoproduction of hydrogen by photosystem I of the thermophilic bluegreen algae Mastigocladus laminosus and Phormidium laminosus.- Photobiochem. and Photobiophys. 1982, v.4, N 5-6, 307-319.

495. Hallenbeck P.O., Kachian L.V., Weissman J.C., Benemann

496. J.R. Solar energy conversion with hydrogen producing culture of the blue green alga, Anabaena cylindrica.-Biotechnol. and Bioeng. Symp. 1978 (1979), N 8, p.283--297.

497. Варфоломеев С.Д., Березин И.В. Конверсия энергии биокаталитическими системами,- В сб. статей: "Преобразование солнечной энергии". Черноголовка, 1981, с.108-132.

498. Варфоломеев С.Д. Конверсия энергии биокаталитическимисистемами. МГУ., М., 1981, 256 с.

499. Красновский А.А. Проблема фотосинтетического водорода.

500. В сб. статей: "Преобразование солнечной энергии".Под ред. Семенова Н.Н. Черноголовка, 1981, с. 82-96.

501. Balzani V., Moggi L., Manfrin M.F., Bolletta P., Gleria

502. M. Solar energy conversion by water photodissociation.-Science 1975, v.189, p.852-856.

503. Amesz J., Yisser J.W., Van der Engh G.J. et al. Reaction kinetics of intermediates of the photosynthetic chain between the two photosystems.- Biochem. Biophys. Acta. 1972, v.256, p.370-380.

504. Vernon L.P. Photochemical and electron transport reactions of bacterial photosynthesis.- Bacteriol. Rev., 1976, v.32, p.257-261.- 287

505. Кок В., Rurainski Н. J., Owens O.V. The reducing powergenerated in photoact I of photosynthesis.- Biochera. Biophys. Acta 1965, v.109, p.347-356.

506. Arnon D.I., bosada M., Nozaki M., Tagawa K. Photoproduction of hydrogen, photofixation of nitrogen and unified concept of photosynthesis.- Nature. 1961, v.190, p.601

507. Black C.C. Chloroplast reactions with dipyridin salts.

508. Biochem. Biophys Acta. 1966, v.120, p.332-340.

509. Брин Г.П., Красновский А.А. Восстановление метилвиологенагидрозином., фотосенсибилизация хлорофиллом и хлороплас-тами.- ДАН СССР., 1972, Т.204, с.1253-1258.

510. Packer L. Problems in stabilization of the in vitro photochemical activity of chloroplasts used for H2 production.-FEBS Letters, 1976, v.64, p.17-19.

511. Packer L., Cullingford W. Stoichiometry of H2 productionby an in vitro chloroplast, ferredoxin, hydrogenase reconstituted system.- Ztschr. Naturforsch., 1978, v. 33, p.113

512. Berenson J.A., Benemann J.R., Kamen D., Kaplan И.О.hydrogen evolution by chloroplast ferredoxin - hydrogenase system.- Proc. Natl. Acad. Sci. US, 1973, v.70, p.2317-2320.

513. Weetall H.H., Krampitz L. Production of hydrogen fromwater using biophototytic method (Anacystis nidulans / immobilized microorganisms).- J. Solid-Phase Biochemistry 1980, v.5, N 2, p.115-124*

514. Дэгли С., Никольсон Д. Метаболические пути. "Мир", М.,1973, 310 с.

515. Герасименко JI.M., Заварзин Г.А. Обмен водорода, углекислоты, кислорода и метана в цианобактериальных сообществах. Микробиология, 1982, Т.51, № 5, с.718-722.

516. Fernandez V.M., Gutierrez С., Ballesteros A. Determination of hydrogenase activity using an anaerobic spectrophotometry device.- Anal. Biochemistry, 1982, v.170, p.85-90.

517. Yu L., Wolin M.J. Hydrogenase measurement with photochemically reduced methyl irologen.- J. Bacteriol. 1969» v.98, N 1, p.51-55.

518. Березин И.В., Рабинович M.JI., Сницын А.П. Исследованиевозможностей кинетического спектрофотометрического метода определения глюкозы.- Биохимия, 1977, Т.42, с.1631-1641.

519. Weetall Н.Н. Trypsin and papain covalently coupled toporous glass: preparation and characterisation.- Science. 1969, V.166, H 3905, p.615-616.благодарность

520. Если не было бы учителя, ни какого успеха ты не добился бы "1. Вьетнамская пословица

521. Автор выражает самую искреннюю признательность и благодарность Член-корр. АН СССР, профессору И.В.Березину, д.х.н., профессору С.Д.Варфоломееву, д.б.н. Е.С.Панцхаве за руководство, советы, заботу и самое доброе отношение к автору.

522. Автор благодарен к.т.н. Д.Я.Медман, к.б.н. Е.Е. Пинчуковой, аспиранту С.В.Калюжному, стажеру В.И. Скляру, оказавшим большую, бесценную помощь при выполнении и оформлении этой работы.

523. Автор.также выражает благодарность коллективу кафедры химической энзимологии химического факультета МГУ, и коллективу института биохимии им. А.Н. Баха АН СССР, которые создали саше необходимые условия для выполнения этой работы.